| 英文缩略词 | 第10-11页 |
| 中文摘要 | 第11-14页 |
| Abstract | 第14-17页 |
| 第一部分 萝卜硫素改善HepG2细胞胰岛素抵抗及其机制的研究 | 第18-35页 |
| 1. 前言 | 第18-20页 |
| 2. 实验材料 | 第20-22页 |
| 2.1 实验细胞 | 第20页 |
| 2.2 主要试剂 | 第20-21页 |
| 2.3 仪器与设备 | 第21页 |
| 2.4 主要试剂和溶剂的配制 | 第21-22页 |
| 2.4.1 棕榈酸的配制 | 第21-22页 |
| 2.4.2 胰岛素的配制 | 第22页 |
| 2.4.3 萝卜硫素的配制 | 第22页 |
| 2.4.4 利福平的配制 | 第22页 |
| 2.4.5 罗格列酮的配制 | 第22页 |
| 3. 实验方法 | 第22-26页 |
| 3.1 细胞的复苏 | 第22页 |
| 3.2 细胞的培养 | 第22页 |
| 3.3 MTT比色法 | 第22-23页 |
| 3.4 IR-Hep G2细胞的建立 | 第23页 |
| 3.5 PXR-si RNA转染Hep G2 | 第23-24页 |
| 3.6 利福平诱导CYP3A4蛋白的活性 | 第24页 |
| 3.7 葡萄糖消耗量的检测 | 第24页 |
| 3.8 甘油二酯含量的检测 | 第24-25页 |
| 3.9 提取细胞总蛋白的方法方法 | 第25页 |
| 3.10 Western blotting操作方法 | 第25-26页 |
| 3.10.1 配分离胶，浓缩胶 | 第25页 |
| 3.10.2 制胶与上样 | 第25页 |
| 3.10.3 电泳与转膜 | 第25页 |
| 3.10.4 洗膜与封闭 | 第25页 |
| 3.10.5 与抗体特异性结合 | 第25-26页 |
| 3.10.6 PVDF膜的显影 | 第26页 |
| 3.11 统计学方法 | 第26页 |
| 4. 实验结果 | 第26-32页 |
| 4.1 萝卜硫素对细胞增殖的影响 | 第26-27页 |
| 4.2 IR-Hep G2模型建立成功 | 第27-28页 |
| 4.3 IR-Hep G2细胞葡萄糖消耗量的影响 | 第28页 |
| 4.4 萝卜硫素对甘油二酯含量的影响 | 第28-29页 |
| 4.5 萝卜硫素对IR-Hep G2细胞CYP3A4、Lipin1蛋白水平的影响 | 第29页 |
| 4.5.1 萝卜硫素对PA诱导的IR-Hep G2细胞蛋白CYP3A4、Lipin1的影响 | 第29页 |
| 4.6 PXR-si RNA后萝卜硫素对PA诱导的IR-Hep G2细胞CYP3A4，Lipin1蛋白表达的影响 | 第29-31页 |
| 4.6.1 PXR-si RNA的IR-Hep G2细胞模型建立 | 第29-30页 |
| 4.6.2 萝卜硫素对PXR-si RNA作用后IR-Hep G2细胞CYP3A4，Lipin1蛋白表达的影响 | 第30-31页 |
| 4.7 萝卜硫素对利福平诱导PXR活 性增加的IR-Hep G2细 胞CYP3A4、Lipin1蛋白表达的影响 | 第31-32页 |
| 4.7.1 利福平诱导PXR活性增加的IR-Hep G2细胞模型建立 | 第31页 |
| 4.7.2 萝卜硫素对利福平作用后IR-Hep G2细胞CYP3A4，Lipin1蛋白表达的影响 | 第31-32页 |
| 5. 讨论 | 第32-34页 |
| 6. 结论 | 第34-35页 |
| 第二部分 萝卜硫素脂质体的制备及其质量评价 | 第35-54页 |
| 1. 前言 | 第35页 |
| 2. 实验材料 | 第35-36页 |
| 2.1 实验仪器和材料 | 第35-36页 |
| 2.2 实验动物 | 第36页 |
| 3. 实验方法 | 第36-41页 |
| 3.1 萝卜硫素脂质体的含量测定 | 第36-38页 |
| 3.1.1 色谱条件 | 第36-37页 |
| 3.1.2 对照品溶液的制备 | 第37页 |
| 3.1.3 脂质体供试品溶液 | 第37页 |
| 3.1.4 专属性考察 | 第37页 |
| 3.1.5 线性关系考察 | 第37页 |
| 3.1.6 精密度实验 | 第37页 |
| 3.1.7 稳定性实验 | 第37页 |
| 3.1.8 重复性实验 | 第37-38页 |
| 3.1.9 回收率实验 | 第38页 |
| 3.1.10 萝卜硫素含量测定 | 第38页 |
| 3.1.11 最优处方及萝卜硫素脂质体的制备 | 第38页 |
| 3.2 萝卜硫素脂质体的质量评价 | 第38-39页 |
| 3.2.1 性状 | 第38-39页 |
| 3.2.2 脂质体的形态观察 | 第39页 |
| 3.2.3 测定脂质体的粒度情况 | 第39页 |
| 3.2.4 脂质体Zeta电位的测定 | 第39页 |
| 3.2.5 脂质体的稳定性的测定 | 第39页 |
| 3.3 萝卜硫素脂质体组织分布研究 | 第39-40页 |
| 3.3.1 组织样品的处理 | 第39页 |
| 3.3.2 萝卜硫素体外分析方法的建立 | 第39-40页 |
| 3.3.2.1 溶液的配制 | 第39页 |
| 3.3.2.2 色谱条件 | 第39页 |
| 3.3.2.3 方法专属性研究 | 第39页 |
| 3.3.2.4 组织样品标准曲线的制备 | 第39-40页 |
| 3.3.2.5 精密度试验 | 第40页 |
| 3.3.2.6 提取回收率试验 | 第40页 |
| 3.3.2.7 HPLC法测脂质体在小鼠体内分布 | 第40页 |
| 3.4 萝卜硫素脂质体对细胞增殖的影响 | 第40-41页 |
| 4. 结果 | 第41-51页 |
| 4.1 萝卜硫素脂质体的含量测定 | 第41-43页 |
| 4.1.1 专属性实验考察 | 第41页 |
| 4.1.2 线性关系考察 | 第41-42页 |
| 4.1.3 精密度实验 | 第42页 |
| 4.1.4 稳定性实验 | 第42页 |
| 4.1.5 重复性实验 | 第42页 |
| 4.1.6 回收率实验 | 第42页 |
| 4.1.7 萝卜硫素含量测定 | 第42-43页 |
| 4.1.8 脂质体的优化设计 | 第43页 |
| 4.2 萝卜硫素脂质体的质量评价 | 第43-46页 |
| 4.2.1 性状 | 第43-44页 |
| 4.2.2 脂质体的形态观察 | 第44页 |
| 4.2.3 脂质体粒径和粒度分布 | 第44-45页 |
| 4.2.4 脂质体Zeta电位的测定 | 第45页 |
| 4.2.5 脂质体稳定性的测定 | 第45-46页 |
| 4.3 萝卜硫素脂质体组织分布性研究 | 第46-50页 |
| 4.3.1 方法专属性 | 第46页 |
| 4.3.2 组织样品标准曲线的制备 | 第46-47页 |
| 4.3.3 精密度试验 | 第47页 |
| 4.3.4 回收率试验 | 第47-48页 |
| 4.3.5 HPLC法测脂质体在小鼠体内分布研究 | 第48-50页 |
| 4.4 萝卜硫素脂质体对IR-Hep G2细胞葡萄糖消耗量的影响 | 第50-51页 |
| 5. 讨论 | 第51-52页 |
| 6. 结论 | 第52-54页 |
| 全文总结 | 第54-56页 |
| 参考文献 | 第56-60页 |
| 综述 | 第60-72页 |
| 参考文献 | 第67-72页 |
| 个人简历 | 第72-74页 |
| 致谢 | 第74-75页 |
