| 英文缩略写词表 | 第6-7页 |
| 中文摘要 | 第7-9页 |
| 英文摘要 | 第9-11页 |
| 前言 | 第12-14页 |
| 材料与方法 | 第14-22页 |
| 1 实验材料 | 第14-15页 |
| 1.1 实验对象 | 第14页 |
| 1.2 实验器材 | 第14-15页 |
| 1.3 主要试剂 | 第15页 |
| 2 实验方法 | 第15-22页 |
| 2.1 动物分组 | 第15页 |
| 2.2 造模方法 | 第15-16页 |
| 2.3 石蜡切片制备 | 第16页 |
| 2.4 脑组织HE染色 | 第16-17页 |
| 2.5 MBP免疫组织化学染色法 | 第17-18页 |
| 2.6 实时荧光定量PCR法 | 第18-20页 |
| 2.7 实验动物生长发育观察评价 | 第20-21页 |
| 2.8 实验动物神经行为学功能评价 | 第21-22页 |
| 结果 | 第22-33页 |
| 1.大鼠生长发育和神经行为学检测评价 | 第22-26页 |
| 1.1 大鼠生长发育观察结果 | 第22-23页 |
| 1.2 大鼠神经行为学检测 | 第23-26页 |
| 2．HE染色脑组织光镜结构改变： | 第26-28页 |
| 3．脑组织MBP免疫组织化学染色结果 | 第28-31页 |
| 4.实时荧光定量PCR结果 | 第31-33页 |
| 4.1 RNA纯度与浓度测定 | 第31页 |
| 4.2 常规PCR扩增结果 | 第31-32页 |
| 4.3 实时荧光定量PCR结果 | 第32页 |
| 4.4 结果 | 第32-33页 |
| 讨论 | 第33-40页 |
| 1 WMI动物模型的建立 | 第33-35页 |
| 1.1 模型动物种属的选择 | 第33页 |
| 1.2 模型动物日龄的选择 | 第33-34页 |
| 1.3 缺氧缺血脑白质损伤的动物模型制作方法 | 第34-35页 |
| 2 WMI动物的生长发育、神经行为学和组织学的改变及其意义 | 第35-38页 |
| 2.1 WMI动物一般情况的改变及其意义 | 第35页 |
| 2.2 WMI动物脑组织的病理形态学变化及其意义 | 第35页 |
| 2.3 WMI动物模型脑组织MBP免疫组化染色和实时荧光定量PCR检测 | 第35-37页 |
| 2.4 WMI动物的神经行为学的变化及其意义 | 第37-38页 |
| 3 DFO对WMI动物的保护作用 | 第38-40页 |
| 小结 | 第40-41页 |
| 参考文献 | 第41-45页 |
| 综述 | 第45-55页 |
| 1.模型动物种属的选择 | 第45-46页 |
| 2.动物模型日龄的选择 | 第46-47页 |
| 3.模型制作方法 | 第47-49页 |
| 3.1 缺血动物模型的建立 | 第47-48页 |
| 3.2 缺氧模型的建立 | 第48-49页 |
| 3.3 脑白质缺氧缺血模型制作方法 | 第49页 |
| 4.缺氧缺血性脑白质损伤模型的评价 | 第49-51页 |
| 参考文献 | 第51-55页 |