| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩写词 | 第8-12页 |
| 引言 | 第12-14页 |
| 1 绪论 | 第14-29页 |
| 1.1 卵黄免疫球蛋白的研究进展 | 第14-19页 |
| 1.1.1 卵黄抗体的结构和功能 | 第14-15页 |
| 1.1.2 IgY的优势 | 第15-16页 |
| 1.1.3 IgY的作用机理 | 第16页 |
| 1.1.4 IgY的应用 | 第16-19页 |
| 1.2 肠道黏膜免疫系统 | 第19-23页 |
| 1.2.1 肠上皮细胞 | 第20页 |
| 1.2.2 树突细胞 | 第20-21页 |
| 1.2.3 派尔淋巴结中的细胞 | 第21-22页 |
| 1.2.4 上皮内淋巴细胞 | 第22页 |
| 1.2.5 固有层淋巴细胞 | 第22-23页 |
| 1.3 鼠伤寒沙门氏菌感染免疫应答过程 | 第23-28页 |
| 1.3.1 鼠伤寒沙门氏菌致病机理 | 第23页 |
| 1.3.2 天然免疫的启动 | 第23-25页 |
| 1.3.3 T细胞的作用 | 第25-27页 |
| 1.3.4 B细胞的作用 | 第27-28页 |
| 1.4 论文选题依据和研究内容 | 第28-29页 |
| 2 特异性IgY对肠道感染小鼠T淋巴细胞的调节作用 | 第29-40页 |
| 2.1 前言 | 第29页 |
| 2.2 实验材料及设备 | 第29-31页 |
| 2.2.1 实验动物 | 第29页 |
| 2.2.2 菌种 | 第29页 |
| 2.2.3 试剂 | 第29-30页 |
| 2.2.4 仪器 | 第30页 |
| 2.2.5 试剂配置 | 第30-31页 |
| 2.3 实验方法 | 第31-33页 |
| 2.3.1 细菌的培养 | 第31页 |
| 2.3.2 动物实验方案 | 第31页 |
| 2.3.3 小鼠攻毒后状态观察以及死亡率和体重的变化 | 第31页 |
| 2.3.4 特异性IgY对攻毒小鼠肠道派尔淋巴结数量和形态的影响 | 第31页 |
| 2.3.5 派尔淋巴结中T淋巴细胞的分离 | 第31-32页 |
| 2.3.6 上皮内T淋巴细胞的分离 | 第32页 |
| 2.3.7 固有层淋巴细胞的分离 | 第32页 |
| 2.3.8 T淋巴细胞的检测 | 第32-33页 |
| 2.3.9 统计分析 | 第33页 |
| 2.4 实验结果 | 第33-37页 |
| 2.4.1 特异性IgY对攻毒小鼠状态、体重以及死亡率的影响 | 第33页 |
| 2.4.2 特异性IgY对攻毒小鼠肠道派尔淋巴结数量和形态的影响 | 第33-35页 |
| 2.4.3 特异性IgY对攻毒小鼠派尔淋巴结T淋巴细胞的影响 | 第35-36页 |
| 2.4.4 特异性IgY对攻毒小鼠上皮内T淋巴细胞的影响 | 第36-37页 |
| 2.4.5 特异性IgY对攻毒小鼠固有层T淋巴细胞的影响 | 第37页 |
| 2.5 讨论 | 第37-39页 |
| 2.6 小结 | 第39-40页 |
| 3 特异性IgY对巨噬细胞吞噬活性的影响 | 第40-51页 |
| 3.1 前言 | 第40页 |
| 3.2 实验材料及设备 | 第40-41页 |
| 3.2.1 细胞株及菌株 | 第40页 |
| 3.2.2 试剂 | 第40-41页 |
| 3.2.3 仪器 | 第41页 |
| 3.2.4 溶液配制 | 第41页 |
| 3.3 实验方法 | 第41-44页 |
| 3.3.1 细菌的培养 | 第41页 |
| 3.3.2 巨噬细胞的培养 | 第41-42页 |
| 3.3.3 异硫氰酸荧光素(FITC)对鼠伤寒沙门氏菌的标记 | 第42页 |
| 3.3.4 FITC标记的鼠伤寒沙门氏菌侵染巨噬细胞时间的选择 | 第42页 |
| 3.3.5 流式细胞仪检测特异性IgY对巨噬细胞吞噬作用的影响 | 第42-43页 |
| 3.3.6 共聚焦显微镜观察特异性IgY对巨噬细胞噬作用的影响 | 第43页 |
| 3.3.7 特异性IgY对巨噬细胞分泌NO的影响 | 第43-44页 |
| 3.3.8 共聚焦显微镜观察特异性IgY对巨噬细胞分泌NO的影响 | 第44页 |
| 3.3.9 统计分析 | 第44页 |
| 3.4 实验结果 | 第44-49页 |
| 3.4.1 FITC对鼠伤寒沙门氏菌的标记率 | 第44-45页 |
| 3.4.2 巨噬细胞对鼠伤寒沙门氏菌的吞噬率随时间的变化 | 第45-46页 |
| 3.4.3 流式细胞仪检测特异性IgY对巨噬细胞吞噬作用的影响 | 第46页 |
| 3.4.4 共聚焦显微镜观察特异性IgY对巨噬细胞吞噬作用的影响 | 第46-47页 |
| 3.4.5 特异性IgY对巨噬细胞分泌NO的影响 | 第47-48页 |
| 3.4.6 共聚焦显微镜观察特异性IgY对巨噬细胞分泌NO的影响 | 第48-49页 |
| 3.5 讨论 | 第49-50页 |
| 3.6 小结 | 第50-51页 |
| 4 特异性IgY对树突细胞成熟度的影响 | 第51-58页 |
| 4.1 前言 | 第51页 |
| 4.2 实验材料及设备 | 第51-52页 |
| 4.2.1 实验动物 | 第51页 |
| 4.2.2 菌种 | 第51页 |
| 4.2.3 试剂 | 第51-52页 |
| 4.2.4 仪器 | 第52页 |
| 4.2.5 溶液配制 | 第52页 |
| 4.3 实验方法 | 第52-53页 |
| 4.3.1 树突细胞的提取 | 第52-53页 |
| 4.3.2 特异性IgY对树突细胞成熟度的影响 | 第53页 |
| 4.3.3 统计分析 | 第53页 |
| 4.4 实验结果 | 第53-56页 |
| 4.4.1 小鼠骨髓来源树突细胞培养 | 第53-55页 |
| 4.4.2 树突细胞表面分子的变化 | 第55-56页 |
| 4.5 讨论 | 第56-57页 |
| 4.6 小结 | 第57-58页 |
| 结论 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-67页 |
| 攻读硕士学位期间发表学术论文情况 | 第67-68页 |
| 致谢 | 第68-69页 |
