| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 第1章 绪论 | 第14-26页 |
| 1.1 引言 | 第14-15页 |
| 1.2 血栓和再狭窄的形成机制 | 第15-16页 |
| 1.3 血管微环境的仿生 | 第16-20页 |
| 1.3.1 EPCs在血管生成的作用 | 第16-17页 |
| 1.3.2 促内皮的仿生 | 第17-18页 |
| 1.3.3 微流控芯片在细胞微环境的应用 | 第18-20页 |
| 1.4 材料表面改性及分析 | 第20-23页 |
| 1.4.1 生物材料表面改性技术 | 第20-21页 |
| 1.4.2 生物材料表面检测技术 | 第21-22页 |
| 1.4.3 材料与生物界面的模拟技术 | 第22-23页 |
| 1.5 本课题研究的意义,主要实验内容和技术路线 | 第23-26页 |
| 1.5.1 本课题研究的意义 | 第23-24页 |
| 1.5.2 本课题研究的主要内容 | 第24-25页 |
| 1.5.3 技术路线 | 第25-26页 |
| 第2章 CD133抗体&Fucoidan涂层的构建 | 第26-43页 |
| 2.1 前言 | 第26-27页 |
| 2.2 实验方案和准备 | 第27-30页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第27页 |
| 2.2.2 检测仪器与设备 | 第27-28页 |
| 2.2.3 制备的工艺流程 | 第28-29页 |
| 2.2.4 CD133抗体的荧光染色 | 第29页 |
| 2.2.5 QCM-D优化反应条件实验 | 第29-30页 |
| 2.3 材料学性能表征 | 第30-31页 |
| 2.3.1 水接触角实验 | 第30-31页 |
| 2.3.2 甲苯胺蓝实验 | 第31页 |
| 2.3.3 酸性橙氨基定量实验 | 第31页 |
| 2.3.4 X射线光电子能谱(XPS) | 第31页 |
| 2.3.5 原子力显微镜(AFM) | 第31页 |
| 2.3.6 统计学分析 | 第31页 |
| 2.4 CD133抗体&Fucoidan涂层的构建 | 第31-36页 |
| 2.4.1 QCM-D研究CD133抗体的接枝的量 | 第32-34页 |
| 2.4.2 CD133抗体接枝过程中粘弹性的变化研究 | 第34-35页 |
| 2.4.3 QCM-D研究Fucoidan的接枝 | 第35-36页 |
| 2.5 材料学表征结果 | 第36-41页 |
| 2.5.1 XPS分析 | 第36-38页 |
| 2.5.2 CD133-FITC分析 | 第38页 |
| 2.5.3 接触角 | 第38-39页 |
| 2.5.4 氨基定量实验和甲苯胺蓝实验结果 | 第39-40页 |
| 2.5.5 AFM表面形貌分析 | 第40-41页 |
| 2.6 本章小结 | 第41-43页 |
| 第3章 CD133抗体&Fucoidan涂层的抗凝血与捕获EPCs的研究 | 第43-52页 |
| 3.1 前言 | 第43页 |
| 3.2 实验材料与设备 | 第43-44页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第43-44页 |
| 3.2.2 检测仪器 | 第44页 |
| 3.3 实验方法 | 第44-45页 |
| 3.3.1 场发射扫描电子显微镜(SEM) | 第44页 |
| 3.3.2 血小板黏附实验方法 | 第44页 |
| 3.3.3 EPCs的培养 | 第44页 |
| 3.3.4 QCM实验 | 第44-45页 |
| 3.4 血液相容性实验结果 | 第45-47页 |
| 3.4.1 血小板粘附 | 第45-46页 |
| 3.4.2 内源性抗凝血APTT实验结果 | 第46-47页 |
| 3.5 QCM-D动态研究CD133抗体捕获EPCs | 第47-51页 |
| 3.5.1 聚多巴胺膜表面的细胞吸附 | 第47-48页 |
| 3.5.2 CD133抗体浓度对捕获EPCs行为的影响 | 第48-51页 |
| 3.6 本章小结 | 第51-52页 |
| 第4章 SDF-1&Fucoidan涂层的抗凝血及EPCs培养 | 第52-64页 |
| 4.1 前言 | 第52-53页 |
| 4.2 涂层的制备 | 第53-55页 |
| 4.2.1 实验方案设计及制备工艺 | 第53-54页 |
| 4.2.2 实验材料与试剂 | 第54页 |
| 4.2.3 实验设备 | 第54页 |
| 4.2.4 EPCs细胞的培养实验方法 | 第54-55页 |
| 4.3 材料学与生物相容性评价 | 第55-56页 |
| 4.3.1 XPS | 第56页 |
| 4.3.2 水接触角 | 第56页 |
| 4.3.3 血小板粘附 | 第56页 |
| 4.3.4 统计学分析 | 第56页 |
| 4.4 材料学表征结果 | 第56-58页 |
| 4.4.1 XPS | 第56-58页 |
| 4.4.2 水接触角 | 第58页 |
| 4.5 SDF-1&Fucoidan的抗凝血性能研究 | 第58-60页 |
| 4.6 EPCs培养实验结果与讨论 | 第60-62页 |
| 4.7 本章小结 | 第62-64页 |
| 第5章 基于微流控芯片有限元模拟CD133抗体捕获和SDF-1趋化EPCs的行为 | 第64-78页 |
| 5.1 前言 | 第64页 |
| 5.2 模拟捕获和归巢EPCs实验原理 | 第64-66页 |
| 5.2.1 CD133抗体捕获 | 第64-65页 |
| 5.2.2 SDF-1趋化 | 第65页 |
| 5.2.3 实验方案 | 第65-66页 |
| 5.2.4 相关模拟公式 | 第66页 |
| 5.3 COMSOL模拟的主要步骤 | 第66-67页 |
| 5.4 实验参数 | 第67-70页 |
| 5.4.1 CD133抗体捕获模拟实验参数 | 第67-69页 |
| 5.4.2 SDF-1归巢EPCs模拟实验参数 | 第69-70页 |
| 5.5 CD133抗体固定表面捕获EPCs的行为 | 第70-74页 |
| 5.5.1 芯片中的压力分布 | 第70页 |
| 5.5.2 芯片中的浓度梯度分布 | 第70-71页 |
| 5.5.3 静态和稳态条件下CD133抗体捕获EPCs的比较 | 第71-72页 |
| 5.5.4 流速对CD133抗体捕获EPCs的影响 | 第72-74页 |
| 5.6 SDF-1趋化EPCs的行为研究 | 第74-76页 |
| 5.6.1 3D芯片中的流速和压力分布 | 第74-75页 |
| 5.6.2 二维模型芯片的SDF-1趋化EPCs的行为研究 | 第75-76页 |
| 5.6.3 研究流速和SDF-1浓度对SDF-1趋化EPCs行为的影响 | 第76页 |
| 5.7 本章小结 | 第76-78页 |
| 结论及展望 | 第78-80页 |
| 致谢 | 第80-81页 |
| 参考文献 | 第81-89页 |
| 攻读硕士期间发表论文和参与科研项目 | 第89页 |
