| 摘要 | 第1-13页 |
| ABSTRACT | 第13-19页 |
| 符号说明 | 第19-20页 |
| 文献综述 | 第20-65页 |
| 综述一 周围神经修复再生的研究进展 | 第20-30页 |
| 1 概述 | 第20-21页 |
| 2 神经损伤引起的神经元改变 | 第21-22页 |
| ·逆行性损伤信号 | 第21页 |
| ·轴突变性 | 第21-22页 |
| ·炎症反应 | 第22页 |
| 3 神经损伤后雪旺细胞的反应 | 第22-25页 |
| ·雪旺细胞 | 第22页 |
| ·损伤后雪旺细胞变化 | 第22-24页 |
| ·转录和翻译 | 第24页 |
| ·长期失神经支配后的反应 | 第24-25页 |
| 4 失神经支配的靶组织变化 | 第25页 |
| 5 小结 | 第25-26页 |
| 参考文献 | 第26-30页 |
| 综述二 物理治疗周围神经损伤的研究概况 | 第30-50页 |
| 1 推拿疗法 | 第30-32页 |
| 2 针刺疗法 | 第32-36页 |
| 3 电刺激疗法 | 第36-37页 |
| 4 磁刺激疗法 | 第37-38页 |
| 5 激光疗法 | 第38-39页 |
| 6 体外冲击波疗法 | 第39页 |
| 7 运动训练 | 第39-40页 |
| 8 其他疗法 | 第40-41页 |
| 9 小结 | 第41-42页 |
| 参考文献 | 第42-50页 |
| 综述三 周围神经修复再生的轴突生长导向机制 | 第50-65页 |
| 1 轴突导向的分子机制 | 第50-52页 |
| 2 轴突生长导向因子 | 第52-56页 |
| ·Netrins | 第53-54页 |
| ·Slits | 第54-56页 |
| 3 Rho GTPases信号 | 第56-57页 |
| 4 细胞骨架成分 | 第57-59页 |
| 5 小结 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-65页 |
| 前言 | 第65-67页 |
| 实验一 推拿对SNI模型大鼠神经超微结构的影响 | 第67-77页 |
| 1 材料与方法 | 第67-69页 |
| ·实验动物 | 第67页 |
| ·主要仪器 | 第67页 |
| ·主要试剂 | 第67页 |
| ·动物分组 | 第67页 |
| ·造模方法 | 第67-68页 |
| ·干预方法 | 第68页 |
| ·行为学检测 | 第68-69页 |
| ·组织样本制备 | 第69页 |
| ·电镜观察 | 第69页 |
| ·统计分析 | 第69页 |
| 2 结果 | 第69-74页 |
| ·大鼠一般状况 | 第69页 |
| ·斜板试验结果 | 第69-70页 |
| ·光热耐痛阈结果 | 第70-71页 |
| ·电镜观察情况 | 第71-72页 |
| ·髓鞘厚度结果 | 第72-73页 |
| ·轴突直径结果 | 第73-74页 |
| 3 讨论 | 第74-76页 |
| ·研究背景 | 第74-75页 |
| ·结果分析 | 第75-76页 |
| 4 小结 | 第76-77页 |
| 实验二 推拿对SNI模型大鼠轴突生长导向因子及其受体的影响 | 第77-106页 |
| 1 材料与方法 | 第77-86页 |
| ·实验动物 | 第77页 |
| ·主要仪器 | 第77页 |
| ·主要试剂 | 第77-78页 |
| ·动物分组 | 第78页 |
| ·造模方法 | 第78页 |
| ·干预方法 | 第78页 |
| ·组织样本制备 | 第78-80页 |
| ·指标检测 | 第80-86页 |
| ·统计分析 | 第86页 |
| 2 结果 | 第86-100页 |
| ·推拿对SNI大鼠轴突生长导向因子Netrin1的影响 | 第86-90页 |
| ·推拿对SNI大鼠Netrin1受体DCC的影响 | 第90-92页 |
| ·推拿对SNI大鼠Netrin1受体UNC5A的影响 | 第92-94页 |
| ·推拿对SNI大鼠轴突生长导向因子Slit2的影响 | 第94-98页 |
| ·推拿对SNI大鼠Slit2受体Robo1的影响 | 第98-100页 |
| 3 讨论 | 第100-104页 |
| ·研究背景 | 第100-102页 |
| ·轴突导向因子对周围神经轴突再生的影响 | 第102-103页 |
| ·推拿对轴突导向因子及其受体的影响 | 第103-104页 |
| 4 小结 | 第104-106页 |
| 实验三 推拿对SNI模型大鼠轴突生长导向机制中Rho GTPase信号转导的影响 | 第106-121页 |
| 1 材料与方法 | 第106-112页 |
| ·实验动物 | 第106页 |
| ·主要仪器 | 第106页 |
| ·主要试剂 | 第106-107页 |
| ·动物分组 | 第107页 |
| ·造模方法 | 第107页 |
| ·干预方法 | 第107-108页 |
| ·坐骨神经功能指数检测 | 第108页 |
| ·组织样本制备 | 第108-109页 |
| ·指标检测 | 第109-112页 |
| ·统计分析 | 第112页 |
| 2 结果 | 第112-118页 |
| ·坐骨神经功能指数(SFI)结果 | 第112-113页 |
| ·脊髓中Rac1抑制情况 | 第113-114页 |
| ·神经中细胞骨架蛋白表达情况 | 第114-118页 |
| 3 讨论 | 第118-120页 |
| ·Rho GTPases是轴突导向信号转导中的关键分子 | 第118页 |
| ·细胞骨架蛋白是决定轴突生长锥导向的直接因素 | 第118-119页 |
| ·神经再生过程中的轴突导向机制 | 第119页 |
| ·结果分析 | 第119-120页 |
| 4 小结 | 第120-121页 |
| 结语 | 第121-123页 |
| 参考文献 | 第123-126页 |
| 附录 | 第126-138页 |
| 附录1 脊髓腹角中Netrin1免疫组化染色结果 | 第126-127页 |
| 附录2 神经中Netrin1免疫组化染色结果 | 第127-128页 |
| 附录3 脊髓腹角中DCC免疫组化染色结果 | 第128-129页 |
| 附录4 神经中DCC免疫组化染色结果 | 第129-130页 |
| 附录5 脊髓腹角中UNC5A免疫组化染色结果 | 第130-131页 |
| 附录6 神经中UNC5A免疫组化染色结果 | 第131-132页 |
| 附录7 脊髓腹角中Slit2免疫组化染色结果 | 第132-133页 |
| 附录8 神经中Slit2免疫组化染色结果 | 第133-134页 |
| 附录9 脊髓腹角中Robo1免疫组化染色结果 | 第134-135页 |
| 附录10 神经中Robo1免疫组化染色结果 | 第135-136页 |
| 附录11 神经中F-actin免疫组化染色结果 | 第136-137页 |
| 附录12 神经中Tublin免疫组化染色结果 | 第137-138页 |
| 致谢 | 第138-139页 |
| 在学期间主要研究成果 | 第139-143页 |
| 个人简历 | 第143页 |
