| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-8页 |
| 第一章 绪论 | 第8-16页 |
| ·甾体化合物概述 | 第8-9页 |
| ·甾体化合物的结构与分类 | 第8页 |
| ·甾体药物的现状 | 第8-9页 |
| ·甾体化合物的生物转化 | 第9-13页 |
| ·甾体化合物生物转化的发展历程 | 第9-10页 |
| ·甾体化合物生物转化的反应类型 | 第10页 |
| ·甾体化合物的羟基化反应 | 第10-11页 |
| ·甾体化合物羟基化反应的机理 | 第11页 |
| ·甾体化合物羟基化反应的限制因素 | 第11-13页 |
| ·去氢表雄酮的羟基化研究 | 第13-14页 |
| ·去氢表雄酮及其羟基化产物 | 第13页 |
| ·生物法合成 7α,15α-diOH-DHEA的研究进展 | 第13-14页 |
| ·静息细胞生物转化工艺 | 第14页 |
| ·本课题的研究意义 | 第14-15页 |
| ·本课题研究的主要内容 | 第15-16页 |
| 第二章 静息细胞转化工艺的优化 | 第16-25页 |
| ·实验材料与仪器 | 第16-17页 |
| ·实验菌株 | 第16页 |
| ·培养基 | 第16-17页 |
| ·主要试剂 | 第17页 |
| ·主要仪器与设备 | 第17页 |
| ·实验方法 | 第17-19页 |
| ·菌体的培养 | 第17-18页 |
| ·生长细胞转化 | 第18页 |
| ·静息细胞的制备与转化 | 第18页 |
| ·静息细胞浓度的测定 | 第18页 |
| ·生长曲线的测定 | 第18页 |
| ·薄层层析（TLC） | 第18页 |
| ·高效液相分析（HPLC） | 第18-19页 |
| ·实验结果与讨论 | 第19-23页 |
| ·亚麻刺盘孢生长曲线 | 第19页 |
| ·静息细胞转化工艺的优化 | 第19-22页 |
| ·C. lini ST-1 静息细胞转化曲线 | 第22-23页 |
| ·静息细胞与生长细胞转化过程中各参数比较 | 第23页 |
| ·本章小结 | 第23-25页 |
| 第三章 底物助溶对C. linli ST-1 静息细胞转化的影响 | 第25-34页 |
| ·实验材料与仪器 | 第25页 |
| ·实验方法 | 第25-27页 |
| ·菌体的培养 | 第25页 |
| ·静息细胞的制备与转化 | 第25页 |
| ·底物助溶的方法 | 第25-26页 |
| ·底物溶解性的测定 | 第26页 |
| ·静息细胞批次转化 | 第26页 |
| ·菌丝体形态的观察 | 第26页 |
| ·细胞膜脂肪酸含量的测定 | 第26页 |
| ·胞外蛋白浓度的测定 | 第26-27页 |
| ·薄层层析（TLC） | 第27页 |
| ·高效液相分析（HPLC） | 第27页 |
| ·实验结果与讨论 | 第27-33页 |
| ·底物的粉碎 | 第27页 |
| ·底物的助溶 | 第27-29页 |
| ·Tween 80 助溶效果评价 | 第29页 |
| ·Tween 80 作用机制验证 | 第29-32页 |
| ·静息细胞的批次转化 | 第32-33页 |
| ·本章小结 | 第33-34页 |
| 第四章 产物的分离提取 | 第34-45页 |
| ·实验材料与仪器 | 第34-35页 |
| ·实验菌株 | 第34页 |
| ·培养基 | 第34-35页 |
| ·主要试剂 | 第35页 |
| ·主要仪器与设备 | 第35页 |
| ·实验方法 | 第35-37页 |
| ·转化液的收集 | 第35页 |
| ·转化液的预处理 | 第35-36页 |
| ·产物粗提 | 第36页 |
| ·产物分离 | 第36-37页 |
| ·薄层层析（TLC） | 第37页 |
| ·高效液相分析（HPLC） | 第37页 |
| ·产物的鉴定 | 第37页 |
| ·实验结果与讨论 | 第37-43页 |
| ·产物的粗提 | 第37-39页 |
| ·柱层析条件的选择 | 第39-42页 |
| ·产物的结晶 | 第42页 |
| ·分离提纯产物的鉴定 | 第42-43页 |
| ·本章小结 | 第43-45页 |
| 主要结论与展望 | 第45-47页 |
| 主要结论 | 第45页 |
| 展望 | 第45-47页 |
| 致谢 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-52页 |
| 附录 1：作者在攻读硕士学位期间发表的论文 | 第52-53页 |
| 附录 2：7α,15α-diOH-DHEA结构鉴定图谱 | 第53-54页 |
