| 摘要 | 第1-7页 |
| 1 引言 | 第7-13页 |
| ·花色苷的种类与结构 | 第7-8页 |
| ·花色苷生物合成途径 | 第8-10页 |
| ·花色苷生物合成相关基因 | 第10-11页 |
| ·花色苷生物合成相关结构基因 | 第10-11页 |
| ·花色苷生物合成相关调节基因 | 第11页 |
| ·花色苷生物合成的影响因素 | 第11-12页 |
| ·本研究的目的及意义 | 第12-13页 |
| 2 欧李果实叶绿素、花色苷、类胡萝卜素及类黄酮含量的变化 | 第13-21页 |
| ·试验材料 | 第13页 |
| ·植物材料 | 第13页 |
| ·主要试剂 | 第13页 |
| ·仪器与设备 | 第13页 |
| ·试验方法 | 第13-14页 |
| ·欧李果实中总花色苷含量测定方法的优化 | 第13页 |
| ·叶绿素与类胡萝卜素总含量的测定 | 第13-14页 |
| ·花色苷总含量的测定 | 第14页 |
| ·类黄酮总含量的测定 | 第14页 |
| ·高效液相色谱法测定花色苷和黄酮类物质 | 第14页 |
| ·结果与分析 | 第14-20页 |
| ·欧李果实中总花色苷含量测定方法的优化 | 第14-15页 |
| ·欧李果实发育过程中叶绿素含量变化 | 第15-16页 |
| ·欧李果实发育过程中类胡萝卜素含量变化 | 第16-17页 |
| ·欧李果实发育过程中花色苷含量变化 | 第17-18页 |
| ·欧李果实发育过程中类黄酮含量变化 | 第18-20页 |
| ·讨论 | 第20-21页 |
| 3 欧李花色苷生物合成相关结构基因的克隆 | 第21-58页 |
| ·试验材料 | 第21-22页 |
| ·植物材料 | 第21页 |
| ·菌株及主要生化试剂 | 第21页 |
| ·试剂的配制 | 第21-22页 |
| ·试验方法 | 第22-26页 |
| ·总RNA的提取及检测 | 第22页 |
| ·RT-PCR扩增目的基因主要片段 | 第22-26页 |
| ·基因全长的克隆 | 第26页 |
| ·结果与分析 | 第26-56页 |
| ·欧李果实总RNA的提取 | 第26-27页 |
| ·欧李CHS基因的克隆和分析 | 第27-32页 |
| ·欧李CHI基因的克隆和分析 | 第32-36页 |
| ·欧李F3H基因的克隆和分析 | 第36-41页 |
| ·欧李DFR基因的克隆和分析 | 第41-46页 |
| ·欧李ANS基因的克隆和分析 | 第46-51页 |
| ·欧李UFGT基因的克隆和分析 | 第51-56页 |
| ·讨论 | 第56-58页 |
| 4 欧李花色苷生物合成相关结构基因的表达分析 | 第58-62页 |
| ·试验材料 | 第58页 |
| ·植物材料 | 第58页 |
| ·主要生化试剂 | 第58页 |
| ·仪器设备 | 第58页 |
| ·试验方法 | 第58-59页 |
| ·总RNA提取及检测 | 第58页 |
| ·引物的设计与合成 | 第58页 |
| ·cDNA第一链的合成 | 第58-59页 |
| ·Real-time qPCR | 第59页 |
| ·结果与分析 | 第59-61页 |
| ·讨论 | 第61-62页 |
| 5 结论 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-67页 |
| Abstract | 第67-69页 |
| 致谢 | 第69页 |