| 中文摘要 | 第1-3页 |
| Abstract | 第3-5页 |
| 中文文摘 | 第5-7页 |
| 目录 | 第7-10页 |
| 绪论 | 第10-26页 |
| ·壳寡糖的应用 | 第11-13页 |
| ·壳寡糖在食品领域中的应用 | 第11-12页 |
| ·壳寡糖在医药领域的应用 | 第12页 |
| ·壳寡糖在农业生产中的应用 | 第12-13页 |
| ·壳寡糖在动物生产中的应用 | 第13页 |
| ·壳寡糖在日用化学品中的应用 | 第13页 |
| ·壳寡糖的制备方法 | 第13-16页 |
| ·化学降解法 | 第13-14页 |
| ·物理场降解法 | 第14-15页 |
| ·生物酶解法 | 第15-16页 |
| ·微生物壳聚糖酶的研究 | 第16-20页 |
| ·壳聚糖酶的发现、分类及来源 | 第16-17页 |
| ·壳聚糖酶的理化性质 | 第17-20页 |
| ·酶的固定化 | 第20-24页 |
| ·固定化酶概述 | 第20-21页 |
| ·酶的固定化方法 | 第21-23页 |
| ·传统的有机无机杂化载体材料的改性概述 | 第23-24页 |
| ·本研究的目的、意义、主要内容 | 第24-26页 |
| ·研究目的 | 第24-25页 |
| ·研究的意义 | 第25页 |
| ·主要内容 | 第25-26页 |
| 第1章 壳聚糖酶产生菌株的筛选及发酵条件优化 | 第26-42页 |
| ·壳聚糖酶产生菌株的筛选及最适发酵条件的探讨 | 第26-31页 |
| ·菌株 | 第26页 |
| ·菌株的分离和培养 | 第26-27页 |
| ·溶液和其它试剂 | 第27页 |
| ·主要仪器 | 第27页 |
| ·壳聚糖酶活性的测定 | 第27-28页 |
| ·壳聚糖酶产生菌株的筛选及最适发酵条件的探讨 | 第28-30页 |
| ·壳聚糖酶产生菌株的26SrDNA鉴定 | 第30-31页 |
| ·结果与分析 | 第31-40页 |
| ·菌株筛选结果 | 第31-33页 |
| ·氨基葡萄糖标准曲线 | 第33页 |
| ·M-2发酵产酶条件的优化 | 第33-38页 |
| ·M-2菌株的26SrDNA鉴定结果 | 第38-40页 |
| ·本章小结 | 第40-42页 |
| 第2章 Penicillium sp.M-2菌株产壳聚糖酶的纯化及酶学特性研究 | 第42-54页 |
| ·材料与方法 | 第42-43页 |
| ·菌种和酶液 | 第42页 |
| ·试剂和药品 | 第42页 |
| ·仪器 | 第42页 |
| ·常用溶液 | 第42-43页 |
| ·培养基 | 第43页 |
| ·方法 | 第43-46页 |
| ·壳聚糖酶活的测定 | 第43页 |
| ·蛋白质浓度的测定 | 第43-44页 |
| ·酶学性质的测定 | 第44-46页 |
| ·结果与分析 | 第46-52页 |
| ·蛋白标准曲线 | 第46页 |
| ·酶的纯化及分子量测定 | 第46-47页 |
| ·壳聚糖酶理化性质 | 第47-52页 |
| ·本章小结 | 第52-54页 |
| 第3章 酶解法制备壳寡糖及其抑菌效能的研究 | 第54-62页 |
| ·壳寡糖的制备及其对植物病原菌抑制作用 | 第54-60页 |
| ·材料与仪器 | 第54-55页 |
| ·实验方法 | 第55-57页 |
| ·结果与分析 | 第57-60页 |
| ·本章小结 | 第60-62页 |
| 第4章 Penicllium sp.M-2的壳聚糖酶的固定化研究 | 第62-74页 |
| ·材料 | 第62-63页 |
| ·菌种和酶液 | 第62页 |
| ·试剂 | 第62页 |
| ·仪器 | 第62页 |
| ·常用溶液 | 第62-63页 |
| ·培养基 | 第63页 |
| ·方法 | 第63页 |
| ·壳聚糖酶活的测定 | 第63页 |
| ·壳聚糖与二氧化硅复合载体的制备 | 第63页 |
| ·壳聚糖酶的固定化 | 第63页 |
| ·结果与讨论 | 第63-73页 |
| ·载体的制备 | 第63-67页 |
| ·固定化酶的条件优化 | 第67-71页 |
| ·固定化酶的稳定性 | 第71-73页 |
| ·本章小结 | 第73-74页 |
| 讨论与建议 | 第74-78页 |
| 参考文献 | 第78-88页 |
| 攻读学位期间承担的科研任务与主要成果 | 第88-90页 |
| 致谢 | 第90-92页 |
| 个人简历 | 第92-94页 |