| 中文摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-11页 |
| 前言 | 第11-14页 |
| 第一部分:胶原诱导关节炎动物模型的建立 | 第14-28页 |
| 研究目的 | 第14页 |
| 材料及方法 | 第14-21页 |
| 1 主要仪器及设备 | 第14-15页 |
| 2 试剂 | 第15页 |
| 3 实验动物 | 第15-16页 |
| 4 方法 | 第16-21页 |
| 结果 | 第21-25页 |
| 1 CIA大鼠一般情况 | 第21页 |
| 2 造模前后体重变化 | 第21-22页 |
| 3 关节部位改变 | 第22-23页 |
| 4 造模后影像学改变 | 第23页 |
| 5 关节滑膜及骨质破坏病理学评价 | 第23-24页 |
| 6 血清中IL-1β、TNF-α测定 | 第24-25页 |
| 讨论 | 第25-27页 |
| 1 RA动物模型的评价 | 第25-26页 |
| 2 IL-1β、TNF-α在RA中的作用 | 第26-27页 |
| 小结 | 第27-28页 |
| 第二部分:胶原诱导关节炎滑膜成纤维样细胞的原代培养 | 第28-40页 |
| 研究目的 | 第28页 |
| 材料与方法 | 第28-34页 |
| 1 主要仪器 | 第28-29页 |
| 2 试剂 | 第29页 |
| 3 组织来源 | 第29-30页 |
| 4 技术路线 | 第30页 |
| 5 体外培养FLS | 第30-31页 |
| 6 FLS计数及活性鉴定——台盼蓝染色 | 第31-32页 |
| 7 FLS鉴定 | 第32-33页 |
| 8 Cell Counting Kit-8(CCK-8)比色法检测FLS的细胞增殖 | 第33-34页 |
| 9 ELISA法检测细胞培养上清液中TNF-α、IL-1β水平 | 第34页 |
| 10 统计学分析 | 第34页 |
| 结果 | 第34-38页 |
| 1 FLS的原代培养 | 第34页 |
| 2 FLS计数及活性鉴定 | 第34页 |
| 3 FLS的鉴定 | 第34-36页 |
| 4 FLS生长曲线和倍增时间 | 第36-37页 |
| 5 细胞上清液中IL-1β、TNF-α测定 | 第37-38页 |
| 讨论 | 第38-39页 |
| 1 FLS在CIA中的作用 | 第38页 |
| 2 CIA-FLS细胞与细胞因子TNF-α、IL-1β | 第38页 |
| 3 FLS培养及鉴定 | 第38-39页 |
| 小结 | 第39-40页 |
| 第三部分:甘草次酸对CIA-FLS作用研究 | 第40-59页 |
| 目的 | 第40页 |
| 材料 | 第40-41页 |
| 1 仪器 | 第40-41页 |
| 2 试剂 | 第41页 |
| 3 试剂配制 | 第41页 |
| 实验方法 | 第41-45页 |
| 1 药物浓度选择 | 第41-42页 |
| 2 实验分组及干预 | 第42页 |
| 3 检测药物对CIA-FLS细胞IL-1β、TNF-α表达的影响 | 第42-45页 |
| 4 统计学分析 | 第45页 |
| 结果 | 第45-55页 |
| 1 计算抑制率:根据OD值,计算药物对细胞的抑制百分率 | 第45-48页 |
| 2 GA、MTX对CIA-FLS细胞IL-1β、TNF--α表达的影响 | 第48-55页 |
| 讨论 | 第55-58页 |
| 1 MTX对RA的作用 | 第55-56页 |
| 2 GA的免疫调节作用 | 第56-58页 |
| 小结 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-63页 |
| 致谢 | 第63-64页 |
| 攻读学位期间的主要研究成果 | 第64页 |
