| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-8页 |
| 引言 | 第8-9页 |
| 1 文献综述 | 第9-20页 |
| ·果实品质 | 第9-12页 |
| ·果实质地的研究进展 | 第9-10页 |
| ·果实色泽的研究进展 | 第10-11页 |
| ·果实香气的研究进展 | 第11页 |
| ·果实生物活性物质的研究 | 第11-12页 |
| ·果实中糖代谢研究进展 | 第12-14页 |
| ·果实中糖、酸含量的研究 | 第12-13页 |
| ·果实的糖代谢 | 第13页 |
| ·糖代谢的相关反应及途径 | 第13-14页 |
| ·植物己糖激酶研究进展 | 第14-19页 |
| ·植物己糖激酶概述 | 第14-15页 |
| ·植物己糖激酶的双重功能 | 第15-17页 |
| ·己糖激酶参与磷酸化反应 | 第15-16页 |
| ·己糖激酶与糖感受和信号转导 | 第16-17页 |
| ·植物己糖激酶基因克隆、表达及转基因研究进展 | 第17-18页 |
| ·己糖激酶调控果实糖水平的研究 | 第18-19页 |
| ·小结 | 第19-20页 |
| 2 枇杷果实己糖激酶基因的克隆及分析 | 第20-30页 |
| ·试验材料及处理 | 第20页 |
| ·试验方法 | 第20-26页 |
| ·总 RNA 提取及检测 | 第20页 |
| ·反转录反应 | 第20-21页 |
| ·反转录产物 PCR | 第21页 |
| ·基因克隆及序列测定 | 第21页 |
| ·基因序列分析及同源性分析 | 第21页 |
| ·3’RACE | 第21-23页 |
| ·5’RACE | 第23-26页 |
| ·琼脂糖凝胶电泳 | 第26页 |
| ·结果与分析 | 第26-30页 |
| ·枇杷不同组织 RNA 质量检测 | 第26-27页 |
| ·枇杷 HXK 基因分离 | 第27页 |
| ·枇杷 HXK 基因序列分析 | 第27-29页 |
| ·植物 HXK 基因系统进化分析 | 第29-30页 |
| 3 枇杷果实发育过程中己糖激酶基因表达动态分析 | 第30-32页 |
| ·试验材料 | 第30页 |
| ·植物材料 | 第30页 |
| ·试验试剂 | 第30页 |
| ·试验仪器 | 第30页 |
| ·试验方法 | 第30-31页 |
| ·RNA 提取及反转录 | 第30页 |
| ·Real-TimeRT-PCR 分析 | 第30-31页 |
| ·数据处理 | 第31页 |
| ·结果与分析 | 第31-32页 |
| 4 枇杷己糖激酶基因亚细胞定位 | 第32-36页 |
| ·试验材料 | 第32页 |
| ·试验试剂 | 第32页 |
| ·试验仪器 | 第32页 |
| ·试验方法 | 第32-33页 |
| ·己糖激酶基因 cDNA 全长序列的获得 | 第32页 |
| ·构建 pCAMBIA-35S:EjHXK 双元表达载体 | 第32页 |
| ·大肠杆菌感受态的制备、转化及鉴定 | 第32-33页 |
| ·质粒 DNA 的提取 | 第33页 |
| ·基因枪法轰击洋葱表皮细胞 | 第33-35页 |
| ·金粉的准备 | 第34页 |
| ·DNA 的包裹 | 第34页 |
| ·基因枪轰击转化 | 第34-35页 |
| ·共聚焦显微镜观察 | 第35页 |
| ·结果与分析 | 第35-36页 |
| ·GFP 对照质粒的亚细胞分布 | 第35页 |
| ·枇杷己糖激酶基因亚细胞分布 | 第35-36页 |
| 5 枇杷果实发育过程中糖积累和己糖激酶活性动态变化 | 第36-41页 |
| ·试验材料 | 第36页 |
| ·植物材料 | 第36页 |
| ·试验试剂 | 第36页 |
| ·试验仪器 | 第36页 |
| ·试验方法 | 第36-38页 |
| ·枇杷中糖分的提取 | 第36-37页 |
| ·糖的标准溶液的配制 | 第37页 |
| ·枇杷果实中糖的 HPLC 测定以及标样的测定 | 第37页 |
| ·枇杷果实己糖激酶的提取及酶活测定 | 第37-38页 |
| ·结果与分析 | 第38-41页 |
| ·糖标准样品的结果分析 | 第38-40页 |
| ·枇杷样品中糖的动态变化 | 第40页 |
| ·果实发育进程中己糖激酶活性的变化 | 第40-41页 |
| 6 小结与讨论 | 第41-42页 |
| 7 结论 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-48页 |
| 个人简介 | 第48-49页 |
| 致谢 | 第49页 |