英文缩略词表 | 第1-9页 |
摘要 | 第9-12页 |
ABSTRACT | 第12-16页 |
前言 | 第16-23页 |
(一) 研究背景 | 第16-20页 |
(二) 研究目的及意义 | 第20页 |
(三) 研究内容及技术路线 | 第20-22页 |
(四) 研究创新点 | 第22-23页 |
第一部分 桑椹提取物对Aβ_(25-35)致PC12细胞损伤保护作用的研究 | 第23-44页 |
1 材料与方法 | 第23-32页 |
·实验材料 | 第23页 |
·主要试剂 | 第23-24页 |
·主要仪器 | 第24页 |
·主要试剂的配制 | 第24-25页 |
·实验方法 | 第25-32页 |
·桑椹提取物的制备及其总花色苷含量的测定 | 第25-26页 |
·PC12细胞培养 | 第26-28页 |
·MTT比色法筛选Aβ_(25-35)致PC12细胞损伤的浓度 | 第28-29页 |
·MTT比色法筛选桑椹提取物抑制Aβ_(25-35)致PC12细胞损伤的浓度 | 第29页 |
·分子探针法检测细胞内活性氧含量 | 第29-30页 |
·Hoechst33342荧光染色法检测细胞凋亡 | 第30-31页 |
·JC-10荧光染色法检测细胞线粒体膜电位 | 第31-32页 |
·统计学处理 | 第32页 |
2 结果 | 第32-41页 |
·桑椹提取物中总花色苷含量测定结果 | 第32-33页 |
·NGF诱导PC12细胞分化 | 第33-34页 |
·不同浓度的Aβ_(25-35)对PC12细胞存活率的影响 | 第34页 |
·不同浓度的桑椹提取物对Aβ_(25-35)致PC12细胞损伤的影响 | 第34-36页 |
·桑椹提取物抑制Aβ_(25-35)诱导PC 12细胞活性氧的产生 | 第36-38页 |
·桑椹提取物抑制Aβ_(25-35)诱导的PC12细胞凋亡 | 第38-40页 |
·桑椹提取物抑制Aβ_(25-35)致PC12细胞线粒体膜电位的下降 | 第40-41页 |
3 讨论 | 第41-43页 |
4 小结 | 第43-44页 |
第二部分 桑椹提取物对Aβ_(25-35)处理PC12细胞基因表达谱的影响 | 第44-67页 |
1 材料与方法 | 第44-54页 |
·实验材料 | 第44页 |
·主要试剂 | 第44-45页 |
·主要仪器 | 第45-46页 |
·主要试剂的配制 | 第46-47页 |
·实验方法 | 第47-54页 |
·PC12细胞培养 | 第47-48页 |
·四甲基偶氮唑盐(MTT)比色法验证桑椹提取物对AP25.35致PC12细胞损伤的保护作用 | 第48页 |
·细胞基因表达谱分析 | 第48-54页 |
·统计学处理 | 第54页 |
2 结果 | 第54-63页 |
·桑椹提取物对Aβ_(25-35)致PC12细胞损伤的干预实验结果 | 第54-56页 |
·桑椹提取物对Aβ_(25-35)处理PC12细胞基因表达谱的影响 | 第56-63页 |
3 讨论 | 第63-65页 |
4 小结 | 第65-67页 |
第三部分 桑椹提取物减缓Aβ_(25-35)致PC12细胞损伤相关机制的研究 | 第67-86页 |
1 材料与方法 | 第67-77页 |
·实验材料 | 第67页 |
·主要试剂 | 第67-68页 |
·主要仪器 | 第68-69页 |
·主要试剂的配制 | 第69-70页 |
·实验方法 | 第70-77页 |
·PC12细胞培养 | 第70页 |
·实验分组及处理 | 第70页 |
·RT-PCR检测PC12细胞Plcb4、Apaf1、Bace2 mRNA表达水平 | 第70-74页 |
·Western blot检测PC12细胞BACE2蛋白表达 | 第74-77页 |
·统计学处理 | 第77页 |
2 结果 | 第77-82页 |
·桑椹提取物对Aβ_(25-35)处理PC12细胞Apaf1、Bace2、Plcb4 mRNA表达的影响 | 第77-81页 |
·桑椹提取物对Aβ_(25-35)处理PC12细胞Bace2蛋白表达的影响 | 第81-82页 |
3 讨论 | 第82-85页 |
4 小结 | 第85-86页 |
全文总结 | 第86-88页 |
参考文献 | 第88-95页 |
文献综述 | 第95-105页 |
参考文献 | 第101-105页 |
在学期间发表论文 | 第105-110页 |
个人简历 | 第110-111页 |
致谢 | 第111页 |