摘要 | 第1-8页 |
ABSTRACT | 第8-9页 |
中英文对照和英文缩写 | 第9-10页 |
第一章 文献综述 | 第10-28页 |
1.前言 | 第10页 |
2.寻找主基因的方法 | 第10-11页 |
3 猪繁殖性状的候选基因研究进展 | 第11-19页 |
·雌激素受体基因(ESTROGEN RECEPTOR,ESR) | 第12-13页 |
·促卵泡激素β亚基基因(FOLLICLE-STIMULATING HORMONE-B,FSHβ) | 第13-14页 |
·视黄酸受体γ亚基和视黄醇结合蛋白4基因(retinoic acid receptor-gamma,RARG;retinol-binding protein 4,RBP4) | 第14-15页 |
·催乳素受体基因(prolactin receptor,PRLR) | 第15页 |
·骨桥蛋白(Osteopontin,OPN) | 第15-16页 |
·褪黑素受体基因(Melatonin Receptor,MR) | 第16页 |
·Ob基因 | 第16-17页 |
·FecB(Fecundity Booroola)基因 | 第17-19页 |
4.分子标记 | 第19-20页 |
5.单核苷酸多态性(SINGLE NUCLEOTIDE POLYMORPHISM,SNP)及其检测 | 第20-21页 |
6.ADAMTS-1基因研究进展 | 第21-28页 |
·排卵过程研究进展 | 第21-23页 |
·猪排卵率和产仔数关系 | 第23页 |
·ADAMS家族 | 第23-25页 |
·ADAMTS-1基因(a disintegrin and metalloproteinase with thrombospondin motifs-1)及其研究进展 | 第25-28页 |
第二章 目的和意义 | 第28-29页 |
第三章 材料和方法 | 第29-36页 |
1.试验材料 | 第29-31页 |
·试验动物血样 | 第29页 |
·主要药品及试剂 | 第29页 |
·缓冲液及常用试剂的配制 | 第29-30页 |
·主要仪器和设备 | 第30-31页 |
2.试验方法 | 第31-36页 |
·DNA的提取 | 第31-32页 |
·基因组DNA浓度的测定和质量检测 | 第32页 |
·引物设计及合成 | 第32页 |
·猪ADAMTS-1基因克隆及序列分析 | 第32-34页 |
·PCR产物回收、纯化 | 第32-33页 |
·纯化的PCR扩增片段的克隆 | 第33-34页 |
·阳性克隆子的鉴定及序列测定 | 第34页 |
·生物信息学网站和分析软件 | 第34页 |
·猪ADAMTS-1基因部分基因组片段的扩增、检测、酶切及电泳分型 | 第34-35页 |
·基因PCR反应体系及条件 | 第34页 |
·PCR产物的检测 | 第34-35页 |
·酶切反应条件 | 第35页 |
·数据处理分析 | 第35-36页 |
·统计软件 | 第35页 |
·基因效应统计分析模型 | 第35-36页 |
第四章 结果与分析 | 第36-49页 |
1.ADAMTS-1基因Pvu Ⅱ酶切位点的遗传效应分析 | 第36-42页 |
·ADAMTS-1基因进行测序比对结果 | 第36页 |
·ADAMTS-1基因Pvu Ⅱ酶切位点的PCR扩增结果 | 第36-37页 |
·酶切产物经琼脂糖凝胶电泳分型结果 | 第37-38页 |
·ADAMTS-1位点在群体中的等位基因频率和基因型频率 | 第38-39页 |
·ADAMTS-1基因型与产仔性状的关联分析 | 第39-42页 |
2.ADAMTS-1基因Mva Ⅰ酶切位点的遗传效应分析 | 第42-49页 |
·ADAMTS-1基因进行测序比对结果 | 第42页 |
·ADAMTS-1基因Mva Ⅰ酶切位点的PCR扩增结果 | 第42-43页 |
·酶切产物经琼脂糖凝胶电泳分型结果 | 第43-44页 |
·ADAMTS-1的Mva Ⅰ位点在群体中的等位基因频率和基因型频率 | 第44-45页 |
·ADAMTS-1基因型与产仔性状的关联分析 | 第45-49页 |
第五章 讨论 | 第49-54页 |
1.关于候选基因策略及SNPs研究 | 第49-50页 |
2.分析影响猪排卵率的因素 | 第50-51页 |
3.猪ADAMTS-1基因的遗传效应分析 | 第51-53页 |
4.本研究的创新点 | 第53页 |
5.下一步工作 | 第53-54页 |
·进一步扩大猪的品种和数量验证基因的功能 | 第53页 |
·研究与相关基因的关系 | 第53页 |
·继续寻找新的候选基因 | 第53-54页 |
小结 | 第54-55页 |
参考文献 | 第55-62页 |
致谢 | 第62页 |