| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-13页 |
| 英文缩写注解 | 第13-14页 |
| 技术路线 | 第14-16页 |
| 前言 | 第16-19页 |
| 第一部分 hESCs向神经上皮细胞诱导分化的研究 | 第19-30页 |
| 1 材料与试剂 | 第19-21页 |
| ·细胞 | 第19页 |
| ·试剂 | 第19-20页 |
| ·主要仪器 | 第20-21页 |
| 2 方法 | 第21-25页 |
| ·细胞培养 | 第21页 |
| ·hESCs的分化 | 第21-22页 |
| ·免疫组化 | 第22-23页 |
| ·RNA的抽提、纯化 | 第23页 |
| ·RT-PCR检测 | 第23-25页 |
| 3 结果 | 第25-27页 |
| ·hESCs的培养 | 第25页 |
| ·hESCs的分化 | 第25-26页 |
| ·免疫组化及计数结果 | 第26-27页 |
| ·RT-PCR检测基因表达结果 | 第27页 |
| 4.讨论 | 第27-30页 |
| 第二部分 诱导神经上皮细胞向多巴胺能神经元分化的研究 | 第30-35页 |
| 1.材料和试剂 | 第30-31页 |
| ·细胞 | 第30页 |
| ·试剂 | 第30-31页 |
| ·主要仪器 | 第31页 |
| 2.方法 | 第31-33页 |
| ·细胞培养 | 第31-32页 |
| ·免疫组化 | 第32页 |
| ·RNA的抽提 | 第32页 |
| ·RT-PCR检测 | 第32-33页 |
| 3.结果 | 第33页 |
| ·神经上皮细胞的分化 | 第33页 |
| ·RT-PCR检测基因表达 | 第33页 |
| ·免疫组化 | 第33页 |
| 4.讨论 | 第33-35页 |
| 第三部分 帕金森大鼠模型的构建 | 第35-40页 |
| 1.材料和试剂 | 第35页 |
| ·材料 | 第35页 |
| ·试剂 | 第35页 |
| 2.方法 | 第35-37页 |
| ·实验分组 | 第36页 |
| ·6-OHDA注射 | 第36页 |
| ·行为学检测 | 第36页 |
| ·组织固定及切片 | 第36页 |
| ·TH免疫组织化学染色 | 第36-37页 |
| 3.结果 | 第37-38页 |
| ·动物行为学检测及评估 | 第37-38页 |
| ·TH免疫组织化学染色结果 | 第38页 |
| 4 讨论 | 第38-39页 |
| 5.结论 | 第39-40页 |
| 总结 | 第40-41页 |
| 附图 | 第41-47页 |
| 参考文献 | 第47-49页 |
| 综述 | 第49-56页 |
| 致谢 | 第56页 |