摘要 | 第1-7页 |
Abstract | 第7-16页 |
第一章 前言 | 第16-31页 |
1 多糖 | 第16-18页 |
·海洋生物多糖 | 第17-18页 |
·海洋微生物多糖 | 第17-18页 |
·海藻多糖 | 第18页 |
2 海洋动物多糖研究进展 | 第18-22页 |
·海洋动物多糖的提取 | 第20页 |
·海洋动物多糖的分离纯化 | 第20-22页 |
3 贻贝的研究 | 第22-27页 |
·贻贝的概况 | 第22-24页 |
·贻贝的外部特征 | 第22-23页 |
·贻贝的种类及分布 | 第23页 |
·贻贝的生长和繁殖 | 第23-24页 |
·贻贝的药用价值和营养价值 | 第24-25页 |
·贻贝多糖的生物活性 | 第25-27页 |
·抗肿瘤 | 第25页 |
·抗氧化 | 第25-26页 |
·免疫调节 | 第26页 |
·抑制流感病毒 | 第26页 |
·抗炎作用 | 第26页 |
·抗衰老 | 第26页 |
·其他 | 第26-27页 |
4 紫贻贝和紫贻贝多糖 | 第27-28页 |
·紫贻贝特征及分布 | 第27-28页 |
·紫贻贝多糖生物活性 | 第28页 |
5 本课题的立题背景和研究思路 | 第28-31页 |
第二章 紫贻贝粗多糖的提取和理化性质研究 | 第31-49页 |
1 材料和仪器 | 第31-32页 |
2 实验方法 | 第32-38页 |
·样品的前处理 | 第32页 |
·冷水提取紫贻贝粗多糖 | 第32页 |
·酶法提取紫贻贝粗多糖 | 第32-34页 |
·60℃热水提取紫贻贝粗多糖 | 第34页 |
·SEVAGE 法脱蛋白 | 第34页 |
·紫贻贝粗多糖的理化性质测定 | 第34-36页 |
·总糖含量测定 | 第34页 |
·蛋白含量测定 | 第34-35页 |
·硫酸根含量测定 | 第35页 |
·糖醛酸含量测定 | 第35-36页 |
·糖胺聚糖含量测定 | 第36页 |
·相对分子质量测定 | 第36页 |
·色谱条件 | 第36页 |
·标准曲线制作 | 第36页 |
·供试品相对分子质量测定 | 第36页 |
·单糖组成测定 | 第36-37页 |
·溶液的配制 | 第36-37页 |
·供试品的全水解 | 第37页 |
·衍生条件 | 第37页 |
·色谱条件 | 第37页 |
·样品单糖组成测定 | 第37页 |
·DPPH 自由基清除能力测定 | 第37-38页 |
3 实验结果 | 第38-48页 |
·紫贻贝粗多糖提取原料的确定 | 第38页 |
·紫贻贝粗多糖的提取结果 | 第38-41页 |
·冷水提取 | 第38-39页 |
·酶法提取 | 第39-40页 |
·热水提取 | 第40-41页 |
·SEVAGE 法结果 | 第41页 |
·紫贻贝粗多糖理化性质测定结果 | 第41-47页 |
·总糖含量测定结果 | 第41页 |
·蛋白含量测定结果 | 第41-42页 |
·硫酸根含量测定结果 | 第42-43页 |
·糖醛酸含量测定结果 | 第43页 |
·糖胺聚糖含量测定结果 | 第43-44页 |
·相对分子质量范围测定结果 | 第44-46页 |
·单糖组成测定结果 | 第46-47页 |
·DPPH 自由基清除能力测定 | 第47-48页 |
4 本章小结 | 第48-49页 |
第三章 紫贻贝水提和酶提多糖的分离纯化 | 第49-68页 |
1 材料和仪器 | 第49-50页 |
2 实验方法 | 第50-52页 |
·凝胶柱层析 | 第50页 |
·阴离子交换柱层析 | 第50页 |
·理化性质测定 | 第50-51页 |
·总糖含量测定 | 第50-51页 |
·蛋白含量测定 | 第51页 |
·糖醛酸含量测定 | 第51页 |
·纯度及相对分子质量范围测定 | 第51页 |
·色谱条件 | 第51页 |
·标准曲线制作 | 第51页 |
·样品相对分子质量测定 | 第51页 |
·柱前衍生高效液相色谱法测定单糖组成 | 第51-52页 |
·样品的完全酸水解 | 第51页 |
·衍生条件 | 第51-52页 |
·色谱条件 | 第52页 |
·样品单糖组成测定 | 第52页 |
3 实验结果 | 第52-66页 |
·LT 粗多糖的分离纯化 | 第52-54页 |
·MT 粗多糖的分离纯化 | 第54-56页 |
·六种组分的理化性质测定结果 | 第56-59页 |
·糖含量测定结果 | 第56-57页 |
·蛋白含量测定结果 | 第57-58页 |
·糖醛酸含量测定结果 | 第58-59页 |
·G25 对五种组分分离纯化 | 第59-61页 |
·样品纯度及相对分子质量测定结果 | 第61-63页 |
·单糖组成分析结果 | 第63-66页 |
4 本章小结 | 第66-68页 |
第四章 紫贻贝水提多糖 HWS 的理化性质和结构分析 | 第68-87页 |
1 材料与仪器 | 第68-69页 |
·实验材料 | 第68页 |
·实验试剂 | 第68-69页 |
·实验仪器 | 第69页 |
2 实验方法 | 第69-72页 |
·凝胶柱层析分离纯化 | 第69页 |
·理化性质分析 | 第69-70页 |
·HWS 的总糖含量测定 | 第69页 |
·HWS 的蛋白含量测定 | 第69页 |
·单糖组成分析 | 第69页 |
·紫外分光光度计全波长扫描 | 第69-70页 |
·相对分子质量及纯度测定 | 第70页 |
·碘液显色鉴定 | 第70页 |
·α-1,4 淀粉酶水解产物分析 | 第70页 |
·红外光谱(IR)分析 | 第70页 |
·甲基化反应 | 第70-71页 |
·GC/MS 分析 | 第71页 |
·高碘酸氧化和SMITH 降解 | 第71页 |
·核磁共振(NMR)分析 | 第71-72页 |
3 实验结果 | 第72-86页 |
·凝胶柱层析分离纯化结果 | 第72页 |
·理化性质测定结果 | 第72-76页 |
·总糖含量测定结果 | 第72-73页 |
·蛋白含量测定结果 | 第73页 |
·单糖组成分析结果 | 第73-75页 |
·紫外分光光度计全波长扫描 | 第75页 |
·相对分子质量及纯度测定结果 | 第75-76页 |
·碘液显色分析结果 | 第76页 |
·TLC 分析结果 | 第76页 |
·红外光谱分析结果 | 第76-77页 |
·甲基化分析结果 | 第77-78页 |
·GC/MS 分析结果 | 第78-80页 |
·高碘酸氧化和SMITH 降解结果 | 第80-83页 |
·核磁共振分析结果 | 第83-86页 |
4 本章小结 | 第86-87页 |
第五章 紫贻贝酶提多糖 MT0-A1 的结构分析 | 第87-103页 |
1 材料与仪器 | 第87-88页 |
·实验材料 | 第87页 |
·实验试剂 | 第87页 |
·实验仪器 | 第87-88页 |
2 实验方法 | 第88-89页 |
·单糖组成分析 | 第88页 |
·相对分子质量及纯度测定 | 第88页 |
·部分酸水解 | 第88页 |
·完全酸水解 | 第88页 |
·IR 分析 | 第88页 |
·甲基化-GC/MS 分析 | 第88页 |
·NMR 分析 | 第88-89页 |
3 实验结果 | 第89-102页 |
·单糖组成结果 | 第89页 |
·相对分子质量及纯度测定结果 | 第89页 |
·部分酸水解结果 | 第89-91页 |
·IR 分析结果 | 第91页 |
·甲基化分析结果 | 第91-96页 |
·核磁共振分析结果 | 第96-102页 |
4 本章小结 | 第102-103页 |
结语 | 第103-105页 |
创新点 | 第105-106页 |
参考文献 | 第106-113页 |
致谢 | 第113-114页 |
个人简历及参与发表的学术论文 | 第114页 |