| 中文摘要 | 第1-4页 |
| 英文摘要 | 第4-5页 |
| 目录 | 第5-7页 |
| 1 前言 | 第7-16页 |
| ·AP2转录因子 | 第7-16页 |
| ·AP2基因 | 第7-8页 |
| ·AP2基因及其特征 | 第8-9页 |
| ·AP2／EREBP基因的表达调控及其在发育过程中的功能 | 第9-12页 |
| ·AP2亚类基因的表达调控及功能研究 | 第9-10页 |
| ·EREBP亚类基因的表达调控及功能研究 | 第10-12页 |
| ·基因功能组学中应用的RNA干涉 | 第12-15页 |
| ·论文设计的基本思路 | 第15-16页 |
| 2 材料与方法 | 第16-27页 |
| ·植物材料 | 第16页 |
| ·菌种与载体 | 第16页 |
| ·主要试剂 | 第16页 |
| ·实验方法 | 第16-27页 |
| ·质粒DNA的提取和纯化(碱—SDS法) | 第16-17页 |
| ·水稻W195RNAi表达载体的构建 | 第17-22页 |
| ·目的片段的PCR扩增 | 第17-18页 |
| ·目的片段PCR产物回收 | 第18-19页 |
| ·载体与反向插入片段的连接 | 第19-22页 |
| ·载体与回收的W195RNAi目的片段酶切 | 第19-20页 |
| ·载体与反向目的片段的连接 | 第20页 |
| ·大肠杆菌感受态细胞的制备及转化 | 第20-21页 |
| ·大肠杆菌阳性克隆的筛选 | 第21页 |
| ·阳性克隆质粒与正向目的片段的连接 | 第21-22页 |
| ·农杆菌感受态细胞的制备 | 第22页 |
| ·农杆菌感受态细胞的转化与转化子的鉴定 | 第22页 |
| ·水稻愈伤组织的诱导与遗传转化 | 第22-23页 |
| ·水稻基因组DNA的微量提取 | 第23-24页 |
| ·水稻总DNA的提取(CTAB法) | 第24-25页 |
| ·W195表达载体构的建 | 第25页 |
| ·W195-GFP洋葱表皮细胞转化 | 第25页 |
| ·水稻W192RNAi载体构建 | 第25-26页 |
| ·获得W195RNAi、W192RNAiT0代转基因水稻 | 第26-27页 |
| 3 结果与分析 | 第27-33页 |
| ·W195的分析结果 | 第27-31页 |
| ·W195的序列分析 | 第27-28页 |
| ·W195RNAi表达载体的构建 | 第28页 |
| ·T0代W195RNAi转基因植株的获得 | 第28-29页 |
| ·T0代W195RNAi转基因植株的PCR检测 | 第29页 |
| ·T0代W195RNAi转基因植株的表型分析 | 第29-30页 |
| ·W195表达载体构建 | 第30页 |
| ·W195蛋白的洋葱表皮细胞的亚细胞定位 | 第30-31页 |
| ·W192的分析结果 | 第31-33页 |
| ·W192的序列分析 | 第31页 |
| ·W192RNAi表达载体的构建 | 第31-32页 |
| ·T0代W192RNAi转基因植株的获得 | 第32页 |
| ·T0代W192RNAi转基因植株的PCR检测 | 第32页 |
| ·T0代w192RNAi转基因植株的表型分析 | 第32-33页 |
| 4 讨论 | 第33-35页 |
| 5 结论 | 第35-36页 |
| 附图 | 第36-44页 |
| 参考文献 | 第44-50页 |
| 缩写词 | 第50-51页 |
| 在学期间发表论文 | 第51-52页 |
| 致谢 | 第52页 |