中文摘要 | 第1-11页 |
Abstract | 第11-14页 |
第一章 文献综述 | 第14-42页 |
·活性氧的种类及其代谢关系 | 第14-15页 |
·胁迫条件下ROS的产生和作用 | 第15-17页 |
·蛋白激酶研究背景 | 第17-21页 |
·生物胁迫中的ROS和蛋白激酶信号 | 第21-27页 |
·生物胁迫时,ROS和蛋白激酶参与SAR的建立 | 第21-23页 |
·氧化猝发时蛋白激酶参与调节ROS的产生和积累 | 第23-27页 |
·非生物胁迫条件下ROS和蛋白激酶信号途径的关系 | 第27-33页 |
·ABA信号网中ROS和PP2C类磷酸酶相互作用 | 第28-29页 |
·保卫细胞中的ABA信号转导 | 第29-30页 |
·渗透胁迫条件下蛋白激酶参与ROS信号转导 | 第30-33页 |
·结束语 | 第33-35页 |
·参考文献 | 第35-42页 |
第二章 研究基础和技术路线 | 第42-44页 |
·论文选题意义及依据 | 第42-43页 |
·实验设计 | 第43-44页 |
第三章 MAP激酶调节蚕豆保卫细胞中ABA诱导的H_2O_2产生 | 第44-61页 |
·材料和方法 | 第45-48页 |
·植物材料及化学试剂 | 第45-46页 |
·表皮条生物学分析 | 第46-47页 |
·荧光探针的导入 | 第47页 |
·激光共聚焦扫描 | 第47页 |
·显微注射 | 第47-48页 |
·结果 | 第48-55页 |
·PD98059对ABA、H_2O_2诱导气孔关闭的影响 | 第48-50页 |
·PD98059对ABA诱导的保卫细胞H_2O_2产生的影响 | 第50-51页 |
·显微注射PD98059对保卫细胞中ABA诱导H_2O_2产生的影响 | 第51-53页 |
·PD98059专一调节ABA诱导的H_2O_2产生 | 第53-55页 |
·讨论 | 第55-58页 |
·参考文献 | 第58-61页 |
第四章 PD98059阻断了蚕豆保卫细胞中ABA和H_2O_2对K~+电流的影响 | 第61-79页 |
·材料与方法 | 第62-65页 |
·植物材料 | 第62页 |
·化学试剂 | 第62页 |
·表皮条生物学分析 | 第62页 |
·实验溶液 | 第62-63页 |
·保卫细胞原生质体的制备 | 第63页 |
·保卫细胞原生质体状态及活力检测 | 第63-64页 |
·全细胞电流的记录 | 第64-65页 |
·结果 | 第65-70页 |
·保卫细胞依赖电压K~+电流特性 | 第65-66页 |
·PD98059阻止并逆转ABA和H_2O_2诱导的内向K~+电流下降 | 第66-69页 |
·BAPTA不影响PD98059对ABA和H_2O_2诱导的内向K~+电流下降可逆性阻断 | 第69-70页 |
·讨论 | 第70-75页 |
·参考文献 | 第75-79页 |
第五章 P38 MAPK调节蚕豆保卫细胞内向K~+电流而阻断气孔关闭 | 第79-94页 |
·材料和方法 | 第80-81页 |
·植物材料 | 第80页 |
·化学试剂 | 第80-81页 |
·表皮条生物学分析 | 第81页 |
·实验溶液 | 第81页 |
·实验方法 | 第81页 |
·结果 | 第81-88页 |
·SB203580显著影响ABA或者H_2O_2诱导的气孔运动 | 第81-84页 |
·SB203580阻断ABA或者H_2O_2诱导的内向K~+电流下降 | 第84-88页 |
·讨论 | 第88-90页 |
·参考文献 | 第90-94页 |
第六章 P38调节蚕豆保卫细胞中ABA和SA诱导的H_2O_2产生 | 第94-111页 |
·材料与方法 | 第95-96页 |
·植物材料 | 第95页 |
·化学试剂 | 第95-96页 |
·荧光探针的导入 | 第96页 |
·激光共聚焦扫描 | 第96页 |
·显微注射 | 第96页 |
·结果 | 第96-103页 |
·SB203580抑制ABA诱导的H_2O_2产生 | 第96-99页 |
·SB202190抑制SA诱导的H_2O_2产生 | 第99-100页 |
·SB203580抑制ABA诱导H_2O_2产生不需要Ca~(2+)参与,但是SB202190抑制SA诱导H_2O_2产生需要Ca~(2+)参与 | 第100-103页 |
·讨论 | 第103-105页 |
·参考文献 | 第105-111页 |
第七章 结论与展望 | 第111-115页 |
·结论 | 第111-113页 |
·创新点 | 第113-114页 |
·展望 | 第114-115页 |