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人参皂苷Rb1水解酶的分离纯化及其性质的研究

一、 论文第1-58页
 (一) 中文摘要第6-8页
 (二) 英文摘要第8-11页
 (三) 前言第11-14页
 (四) 第一章 糖苷酶活性测定方法的建立第14-23页
  引言第14页
  1-1 实验材料第14页
  1-2 实验仪器与试剂第14-15页
  1-3 实验方法第15-16页
   1-3-1 pH值对β-葡萄糖苷酶活性的影响第15页
   1-3-2 反应温度对β-葡萄糖苷酶活性的影响第15页
   1-3-3 pNPG法测β-葡萄糖苷酶的活力第15页
   1-3-4 HPLC检测条件筛选第15页
    1-3-4-1 氨基柱检测条件第15页
    1-3-4-2 C_(18)柱检测条件第15页
   1-3-5 水解人参皂苷Rb_1活性反应初速度时间测定第15-16页
   1-3-6 蛋白含量的测定方法第16页
   1-3-7 电泳条件及染色方法第16页
    1-3-7-1 SE酶电泳上样量选择第16页
    1-3-7-2 PAGE糖苷酶活性染色第16页
  1-4 结果和讨论第16-22页
  1-5 小结第22-23页
 (五) 第二章 对SE酶不同纯化方法的探索和选择第23-36页
  引言第23页
  2-1 实验材料第23页
  2-2 实验仪器与试剂第23-24页
  2-3 实验方法第24-26页
   2-3-1 盐析法第24页
   2-3-2 乙醇沉淀法第24页
   2-3-3 DEAE-纤维素离子交换层析第24-25页
    2-3-3-1 缓冲条件选择第24页
    2-3-3-2 洗脱条件选择第24-25页
   2-3-4 DEAE-Sepharose离子交换层析第25页
    2-3-4-1 DEAE-Sepharose CL-6B对原酶吸附容量第25页
    2-3-4-2 DEAE-Sepharose离子交换分段层析第25页
    2-3-4-3 DEAE-Sepharose离子交换分段层析第25页
   2-3-5 羟基磷灰石(HA)层析第25-26页
   2-3-6 Sephadex G-200层析第26页
  2-4 结果和讨论第26-35页
  2-5 小结第35-36页
 (六) 第三章 对SE酶的分离纯化第36-44页
  引言第36页
  3-1 实验材料第36页
  3-2 实验仪器与试剂第36页
  3-3 实验方法第36-37页
   3-3-1 离子交换分段层析分离样品第36页
   3-3-2 离子交换梯度层析分离样品第36-37页
   3-3-3 样品的除盐浓缩第37页
   3-3-4 凝胶过滤层析分离样品第37页
   3-3-5 SDS-电泳测分子量第37页
   3-3-6 凝胶过滤层析测分子量第37页
  3-4 结果和讨论第37-42页
  3-5 小结第42-44页
 (七) 第四章 对β-葡萄糖苷酶特性的研究第44-53页
  引言第44页
  4-1 实验材料第44页
  4-2 实验仪器与试剂第44页
  4-3 实验方法第44-45页
   4-3-1 酶解时间的测定第44页
   4-3-2 酶的最适pH第44页
   4-3-3 酶的pH稳定性第44页
   4-3-4 酶的最适温度第44-45页
   4-3-5 酶的热稳定性第45页
   4-3-6 金属离子、激活剂和抑制剂对酶的影响第45页
   4-3-7 动力学参数的测定第45页
   4-3-8 酶解Rb_1产物随时间的变化第45页
  4-4 结果和讨论第45-51页
  4-5 小结第51-53页
 (八) 结论第53-54页
 (九) 展望第54-55页
 (十) 致谢第55-56页
 (十一) 参考文献第56-58页
二、 文献综述第58-73页
 (一) 正文第58-69页
 (二) 参考文献第69-73页

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