| 中英文缩写对照表 | 第6-7页 |
| 中文摘要 | 第7-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 引言 | 第13-15页 |
| 第一节 自然流产小鼠模型CBA/J~((H-2k))×DBA/2~((H-2d))的流产病因探究 | 第15-25页 |
| 1 材料 | 第15-17页 |
| 1.1 动物 | 第15页 |
| 1.2 主要试剂 | 第15-16页 |
| 1.2.1 RNA制备和定量RT-PCR | 第15-16页 |
| 1.2.2 流式细胞检测试剂 | 第16页 |
| 1.3 主要仪器设备 | 第16-17页 |
| 2 方法 | 第17-20页 |
| 2.1 造模 | 第17页 |
| 2.2 样本采集 | 第17页 |
| 2.3 观察指标及方法 | 第17-20页 |
| 2.3.1 胚胎吸收率计算 | 第17-18页 |
| 2.3.2 HE染色 | 第18页 |
| 2.3.3 RT-PCR检测检测目的基因 | 第18-20页 |
| 2.3.4 胎盘组织淋巴细胞分离 | 第20页 |
| 2.3.5 流式细胞技术 | 第20页 |
| 2.4 统计学方法 | 第20页 |
| 3 结果 | 第20-24页 |
| 4 结论 | 第24-25页 |
| 第二节 丹参提取物Sal B在 CBA/J~((H-2k))×DBA/2~((H-2d))自然流产小鼠模型中的免疫调节作用研究 | 第25-35页 |
| 1 材料 | 第25页 |
| 1.1 动物 | 第25页 |
| 1.2 药物 | 第25页 |
| 2 方法 | 第25-29页 |
| 2.1 实验分组 | 第25页 |
| 2.2 造模及用药 | 第25-26页 |
| 2.3 样本采集 | 第26页 |
| 2.4 观察指标及方法 | 第26-29页 |
| 2.5 统计学方法 | 第29页 |
| 3 结果 | 第29-35页 |
| 3.1 流产率 | 第29-30页 |
| 3.2 SalB增加自然流产模型中胎盘组织的迷路区面积 | 第30-31页 |
| 3.3 SalB可降低自然流产模型胎盘组织中促炎症细胞因子表达 | 第31页 |
| 3.4 Sal B降低胎盘组织中NF-κB、TNF-α、TLR的表达 | 第31-32页 |
| 3.5 RT-PCR检测脾脏相关目的基因表达 | 第32-33页 |
| 3.6 RT-PCR检测蜕膜相关目的基因表达 | 第33页 |
| 3.7 流式细胞技术检测脾细胞中淋巴细胞表达 | 第33-34页 |
| 3.8 Sal B降低胎盘组织中Nkp46~+ NK细胞和CD8~+ CTL的数量 | 第34-35页 |
| 讨论 | 第35-40页 |
| 结论 | 第40-41页 |
| 致谢 | 第41-42页 |
| 参考文献 | 第42-45页 |
| 附录一 不明原因复发性流产免疫病因的研究进展 | 第45-53页 |
| 参考文献 | 第50-53页 |
| 附录二 丹参酚酸 B 灌胃的免疫性自然流产模型小鼠流产情况、胎盘和脾脏组织淋巴细胞及胎盘组织炎症因子表达观察 | 第53-63页 |
| 参考文献 | 第61-63页 |
| 附录三 参加学术会议情况 | 第63页 |
