| 一、缩略语表 | 第1-7页 |
| 二、中文摘要 | 第7-10页 |
| 三、英文摘要 | 第10-14页 |
| 四、正文 | 第14-57页 |
| (一) 前言 | 第14-17页 |
| (二) 材料与方法 | 第17-24页 |
| 1.材料 | 第17页 |
| 2.试剂来源 | 第17-18页 |
| 3.仪器设备 | 第18页 |
| 4.实验方法 | 第18-24页 |
| ·细胞培养与处理 | 第18-20页 |
| ·溶液配置 | 第18-19页 |
| ·细胞培养及MPP~+处理 | 第19-20页 |
| ·细胞活性检测(MTT实验) | 第20页 |
| ·细胞损伤检测(Hochest染色和8-oxodG免疫细胞化学染色) | 第20-21页 |
| ·溶液配置 | 第20页 |
| ·细胞培养用玻片的准备 | 第20页 |
| ·Hochest染色 | 第20页 |
| ·8-oxodG免疫细胞化学染色 | 第20-21页 |
| ·PD动物模型的制备及样品收集 | 第21页 |
| ·免疫印迹(Western blot)实验 | 第21-23页 |
| ·溶液配置 | 第21-22页 |
| ·PD细胞模型蛋白提取 | 第22页 |
| ·PD动物模型蛋白提取 | 第22页 |
| ·Western blot | 第22-23页 |
| ·数据的统计与分析 | 第23-24页 |
| (三) 实验结果 | 第24-31页 |
| 1. MPP~+对PC12细胞的形态影响研究 | 第24页 |
| 2. MPP~+对PC12细胞的活力影响研究 | 第24页 |
| 3. Hochest染色研究PC12细胞的凋亡情况 | 第24-25页 |
| 4. PD细胞模型上BER和NER相关蛋白表达的变化 | 第25-28页 |
| ·OGG1的时程依赖性变化 | 第26页 |
| ·XPA的时程依赖性变化 | 第26页 |
| ·XPB的时程依赖性变化 | 第26-27页 |
| ·XPF的时程依赖性变化 | 第27页 |
| ·XPG的时程依赖性变化 | 第27页 |
| ·PCNA的时程依赖性变化 | 第27-28页 |
| 5. 8-oxodG免疫细胞化学染色研究PC12细胞的DNA氧化损伤 | 第28-29页 |
| 6. PD动物模型上BER和NER相关蛋白的表达变化 | 第29-31页 |
| ·PD动物模型上TH的表达变化 | 第29页 |
| ·PD动物模型上BER相关蛋白的表达变化 | 第29-30页 |
| ·PD动物模型上NER相关蛋白的表达变化 | 第30-31页 |
| (四) 讨论 | 第31-36页 |
| 1.NER参与脑内的DNA氧化损伤的修复 | 第31-32页 |
| 2.DNA氧化损伤修复通路之间的关系 | 第32-34页 |
| 3.NER与神经退行性疾病 | 第34-36页 |
| (五) 小结 | 第36页 |
| (六) 结论及意义 | 第36-37页 |
| (七) 图版说明 | 第37-49页 |
| (八) 参考文献 | 第49-57页 |
| 五、文献综述 | 第57-82页 |
| 六、致谢 | 第82-83页 |
