| 英文缩略词 | 第1-10页 |
| 中文摘要 | 第10-13页 |
| 英文摘要 | 第13-17页 |
| 前言 | 第17-25页 |
| 参考文献 | 第21-25页 |
| 第一部分 玉屏风多糖(YPF-P)的制备及多糖组成结构研究 | 第25-60页 |
| 1. 材料 | 第25-27页 |
| 2. 方法 | 第27-37页 |
| ·正交实验法优选YPF-P 的提取工艺 | 第27-29页 |
| ·YPF-P 的提取、分离及纯化 | 第29-31页 |
| ·多糖含量测定 | 第31-32页 |
| ·蛋白含量测定 | 第32-33页 |
| ·高效凝胶渗透色谱法(HPGPC)测定多糖分子量及化学均一性检验 | 第33-34页 |
| ·多糖完全酸水解与YPF-P1单糖组成分析 | 第34-36页 |
| ·多糖完全酸水解 | 第34页 |
| ·TLC 法检测YPF-P1 单糖组成 | 第34页 |
| ·HPLC 法分析YPF-P1 单糖组成及摩尔比 | 第34-36页 |
| ·YPF-P1中糖醛酸测定方法 | 第36页 |
| ·高碘酸氧化 | 第36-37页 |
| ·YPF-P1 紫外吸收光谱检测 | 第37页 |
| ·YPF-P1 红外光谱检测 | 第37页 |
| ·YPF-P11H-NMR 谱与13C-NMR 谱检测 | 第37页 |
| ·统计学处理 | 第37页 |
| 3. 结果 | 第37-53页 |
| ·YPF-P 提取工艺的优选 | 第37-39页 |
| ·YPF-P 分离、纯化洗脱曲线 | 第39-41页 |
| ·多糖及蛋白含量测定 | 第41-43页 |
| ·化学均一性及分子量测定 | 第43-44页 |
| ·YPF-P1单糖组成分析 | 第44-48页 |
| ·TLC法鉴定单糖组成 | 第44-45页 |
| ·HPLC法分析单糖组成及摩尔比测定 | 第45-47页 |
| ·HPLC方法学考察 | 第47页 |
| ·半乳糖醛酸测定 | 第47-48页 |
| ·YPF-P1 高碘酸氧化分析 | 第48页 |
| ·红外光谱分析 | 第48-49页 |
| ·核磁共振碳谱及氢谱分析 | 第49-53页 |
| 4. 讨论 | 第53-57页 |
| ·正交设计法优选YPF-P 的提取工艺 | 第53-54页 |
| ·YPF-P 的组成、分子量分布及主成分多糖YPF-P1 单糖组成、结构研究 | 第54-57页 |
| 5. 参考文献 | 第57-60页 |
| 第二部分 玉屏风多糖(YPF-P)对实验性肝纤维化的预防作用及部分机制研究 | 第60-104页 |
| 1. 材料 | 第60-63页 |
| 2. 方法 | 第63-73页 |
| ·动物模型制备及给药方案 | 第63-64页 |
| ·标本采集 | 第64页 |
| ·HE染色 | 第64页 |
| ·Masson染色 | 第64-66页 |
| ·电镜检测肝细胞、HSC超微结构 | 第66页 |
| ·ELISA法检测血清TGF-β1水平 | 第66页 |
| ·免疫组化法测定肝组织TGF-β1、α-SMA蛋白含量 | 第66-67页 |
| ·血清透明质酸（HA），层粘连蛋白（LN），IV 型胶原（CIV）及III 型前胶原（PCIII）的测定 | 第67页 |
| ·肝组织中羟脯氨酸（Hyp）测定 | 第67-68页 |
| ·RT-PCR 法检测 mRNA 表达 | 第68-71页 |
| ·HSC-T6 培养与传代 | 第71页 |
| ·HSC-T6生长曲线的绘制 | 第71-72页 |
| ·MTT法检测YPF-P、YPF-P1对HSC-T6增殖的影响 | 第72页 |
| ·不同作用浓度YPF-P 及YPF-P1 对TGF-β1 刺激HSC-T6 增殖的影响 | 第72页 |
| ·不同作用时间YPF-P 及YPF-P1 对TGF-β1 刺激HSC-T6 增殖的影响 | 第72页 |
| ·统计学处理 | 第72-73页 |
| 3. 结果 | 第73-93页 |
| ·YPF-P对CC14诱导的大鼠肝纤维化的预防作用及部分机制研究 | 第73-88页 |
| ·实验大鼠一般状况 | 第73-74页 |
| ·病理组织学观察及病理分级 | 第74-77页 |
| ·肝细胞、HSC超微结构观察 | 第77-79页 |
| ·YPF-P对肝纤维化大鼠血清生化指标及肝组织Hyp的影响 | 第79-81页 |
| ·YPF-P 对肝纤维化大鼠血清TGF-β1 水平及其蛋白含量的影响 | 第81-83页 |
| ·YPF-P对CC14诱导的肝纤维化大鼠肝脏α-SMA蛋白及mRNA表达的影响 | 第83-86页 |
| ·YPF-P 对CC14 诱导的肝纤维化大鼠肝脏TIMP-1、MMP-13、Procollage I Collagen ⅢmRNA 表达的影响 | 第86-88页 |
| ·体外研究YPF-P、YPF-P1对TGF-β1诱导的HSC-T6增殖抑制作用 | 第88-93页 |
| ·细胞一般状况及形态观察 | 第88-89页 |
| ·YPF-P、YPF-P1对正常HSC-T6生长曲线的影响 | 第89-91页 |
| ·不同浓度、不同时间YPF-P、YPF-P1 对TGF-β1 诱导的HSC-T6 增殖抑制作用 | 第91-93页 |
| 4. 讨论 | 第93-100页 |
| ·CC14诱导的大鼠肝纤维化模型评价 | 第93页 |
| ·YFP-P对CC14诱导的大鼠肝纤维化预防作用及部分机制 | 第93-100页 |
| ·YFP-P对CCl4诱导的肝纤维化大鼠血清生化指标及肝组织羟脯氨酸的影响 | 第93-94页 |
| ·YFP-P对CCl4诱导的肝纤维化大鼠肝脏病理学变化的影响 | 第94-95页 |
| ·YFP-P对CCl4诱导的肝纤维化大鼠肝脏TGF-β1、α-SMA表达的影响 | 第95-96页 |
| ·YFP-P对CCl4诱导的肝纤维化大鼠肝脏TIMP-1、MMP-13、ProcollageⅠ、Collagen Ⅲ mRNA表达的影响 | 第96-98页 |
| ·YFP-P 与黄芪多糖(AP)预防大鼠肝纤维化的疗效比较 | 第98页 |
| ·YFP-P、YFP-P1对TGF-β1诱导的HSC-T6增殖抑制作用 | 第98-100页 |
| ·小结 | 第100页 |
| 5. 参考文献 | 第100-104页 |
| 结论 | 第104-105页 |
| 附录 | 第105-107页 |
| 致谢 | 第107-109页 |
| 综述 | 第109-117页 |
