| 摘要 | 第9-13页 |
| ABSTARCT | 第13-18页 |
| 英文缩写词目录 | 第18-20页 |
| 引言 | 第20-22页 |
| 第一部分 文献综述 | 第22-44页 |
| 第一章 哺乳动物蛙皮素样肽及其受体研究进展 | 第22-44页 |
| 1 蛙皮素相关肽的研究进展 | 第22-24页 |
| 2 蛙皮素受体的研究进展 | 第24-26页 |
| 3 NMBR研究进展 | 第26-30页 |
| 3.1 NMBR的基因克隆和结构分析 | 第26页 |
| 3.2 NMBR基因结构 | 第26-27页 |
| 3.3 NMBR的表达 | 第27页 |
| 3.4 NMBR激动剂功能位点 | 第27-28页 |
| 3.5 NMBR信号转导 | 第28-29页 |
| 3.6 NMBR的功能 | 第29-30页 |
| 4 GRPR研究进展 | 第30-34页 |
| 4.1 GRPR的基因克隆和结构 | 第30页 |
| 4.2 GRPR基因结构 | 第30-31页 |
| 4.3 GRPR的表达 | 第31-32页 |
| 4.4 GRPR激动剂功能位点 | 第32页 |
| 4.5 GRPR信号转导 | 第32-33页 |
| 4.6 GRPR的功能 | 第33-34页 |
| 5 NMB和GRP的研究展望 | 第34-35页 |
| 参考文献 | 第35-44页 |
| 第二部分 试验研究 | 第44-188页 |
| 第二章 NMB及其受体基因克隆和序列分析 | 第44-60页 |
| 1 材料与方法 | 第44-48页 |
| 1.1 试验动物 | 第44页 |
| 1.2 试验仪器 | 第44-45页 |
| 1.3 试验试剂 | 第45页 |
| 1.4 试验方法 | 第45-48页 |
| 2 结果 | 第48-56页 |
| 2.1 猪NMB和NMBR基因的克隆 | 第48-50页 |
| 2.2 NMB测序结果及分析 | 第50-52页 |
| 2.3 NMBR测序结果及分析 | 第52-56页 |
| 3 讨论 | 第56-57页 |
| 4 结论 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-60页 |
| 第三章 NMB及其受体在猪体内的表达和NMBR在猪外周组织中的分布定位 | 第60-82页 |
| 1 材料与方法 | 第60-64页 |
| 1.1 试验动物 | 第60页 |
| 1.2 试验仪器 | 第60-61页 |
| 1.3 试验试剂 | 第61页 |
| 1.4 试验方法 | 第61-64页 |
| 2 结果 | 第64-76页 |
| 2.1 NMB和NMBR mRNA在猪体内的表达 | 第64-66页 |
| 2.2 NMBR在猪外周组织器官中的分布定位 | 第66-76页 |
| 3 讨论 | 第76-78页 |
| 3.1 NMB及其受体mRNA在猪体内的表达情况 | 第76-77页 |
| 3.2 NMBR在猪外周组织的分布与功能分析 | 第77-78页 |
| 4 结论 | 第78-79页 |
| 参考文献 | 第79-82页 |
| 第四章 GRP及其受体基因克隆和序列分析 | 第82-102页 |
| 1 材料与方法 | 第82-85页 |
| 1.1 试验动物 | 第82页 |
| 1.2 试验仪器 | 第82页 |
| 1.3 试验试剂 | 第82-83页 |
| 1.4 试验方法 | 第83-85页 |
| 2 结果 | 第85-98页 |
| 2.1 猪GRP基因的电子克隆 | 第85-88页 |
| 2.2 猪GRP和GRPR基因的克隆 | 第88-90页 |
| 2.3 GRP测序结果及分析 | 第90-93页 |
| 2.4 GRPR测序结果及分析 | 第93-98页 |
| 3 讨论 | 第98-99页 |
| 4 结论 | 第99-100页 |
| 参考文献 | 第100-102页 |
| 第五章 GRP及其受体在猪体内的表达和GRPR在猪外周组织中的分布定位 | 第102-122页 |
| 1 材料与方法 | 第102-105页 |
| 1.1 试验动物 | 第102页 |
| 1.2 试验仪器 | 第102-103页 |
| 1.3 试验试剂 | 第103页 |
| 1.4 试验方法 | 第103-105页 |
| 2 结果 | 第105-113页 |
| 2.1 GRP和GRPR mRNA在猪体内的表达情况 | 第105-107页 |
| 2.2 GRPR在猪外周组织器官中的分布定位 | 第107-113页 |
| 3 讨论 | 第113-115页 |
| 4 结论 | 第115-116页 |
| 参考文献 | 第116-122页 |
| 第六章 NMB及其受体在小梅山公猪生殖轴的生后发育性变化 | 第122-134页 |
| 1 材料与方法 | 第122-124页 |
| 1.1 试验动物及分组 | 第122页 |
| 1.2 试验仪器 | 第122页 |
| 1.3 试验试剂 | 第122-123页 |
| 1.4 试验方法 | 第123-124页 |
| 2 结果 | 第124-128页 |
| 2.1 NMB及其受体mRNA在小梅山公猪下丘脑的发育学变化 | 第124-125页 |
| 2.2 NMB及其受体mRNA在小梅山公猪垂体的发育学变化 | 第125-127页 |
| 2.3 NMB及其受体mRNA在小梅山公猪睾丸的发育学变化 | 第127-128页 |
| 3 讨论 | 第128-130页 |
| 4 结论 | 第130-131页 |
| 参考文献 | 第131-134页 |
| 第七章 NMB对体外培养猪睾丸间质细胞的影响 | 第134-166页 |
| 1 材料与方法 | 第134-141页 |
| 1.1 试验动物 | 第134-135页 |
| 1.2 试验仪器 | 第135页 |
| 1.3 试验试剂 | 第135页 |
| 1.4 试验方法 | 第135-141页 |
| 2 结果 | 第141-158页 |
| 2.1 猪睾丸间质细胞存活率和鉴定 | 第141-143页 |
| 2.2 NMBR在猪睾丸间质细胞中的分布 | 第143-144页 |
| 2.3 NMB对猪睾丸间质细胞睾酮分泌的影响 | 第144-145页 |
| 2.4 NMB对猪睾丸间质细胞睾酮合成相关酶mRNA表达的影响 | 第145-150页 |
| 2.5 NMB对猪睾丸间质细胞睾酮合成关键蛋白表达的影响 | 第150-153页 |
| 2.6 NMB对猪睾丸间质细胞增殖的影响 | 第153-155页 |
| 2.7 NMB对猪睾丸间质细胞凋亡的影响 | 第155-158页 |
| 3 讨论 | 第158-162页 |
| 3.1 NMB对猪睾丸间质细胞睾酮分泌的影响 | 第158-159页 |
| 3.2 NMB对猪睾丸间质细胞睾酮合成的调节机制 | 第159-161页 |
| 3.3 NMB对猪睾丸间质细胞增殖与凋亡的影响 | 第161-162页 |
| 4 结论 | 第162-163页 |
| 参考文献 | 第163-166页 |
| 第八章 GRP对体外培养猪睾丸间质细胞的影响 | 第166-188页 |
| 1 材料与方法 | 第166-170页 |
| 1.1 试验动物 | 第166页 |
| 1.2 试验仪器 | 第166-167页 |
| 1.3 试验试剂 | 第167页 |
| 1.4 试验方法 | 第167-170页 |
| 2 结果 | 第170-180页 |
| 2.1 猪睾丸间质细胞活率和鉴定 | 第170页 |
| 2.2 GRPR在猪睾丸间质细胞中的分布 | 第170-171页 |
| 2.3 GRP对猪睾丸间质细胞睾酮分泌的影响 | 第171-172页 |
| 2.4 GRP对猪睾丸间质细胞睾酮合成相关基因表达的影响 | 第172-174页 |
| 2.5 GRP对猪睾丸间质细胞睾酮合成关键蛋白表达的影响 | 第174-176页 |
| 2.6 GRP对猪睾丸间质细胞数量的影响 | 第176-177页 |
| 2.7 GRP对猪睾丸间质细胞增殖相关蛋白表达的影响 | 第177-178页 |
| 2.8 GRP对猪睾丸间质细胞凋亡相关蛋白表达的影响 | 第178-180页 |
| 3 讨论 | 第180-182页 |
| 3.1 GRP对猪睾丸间质细胞睾酮分泌的影响 | 第180-181页 |
| 3.2 GRP对猪睾丸间质细胞睾酮合成的作用机制 | 第181-182页 |
| 3.3 GRP对猪睾丸间质细胞增殖与凋亡的影响 | 第182页 |
| 4 结论 | 第182-183页 |
| 参考文献 | 第183-188页 |
| 全文总结 | 第188-190页 |
| 论文创新点 | 第190-192页 |
| 附录 | 第192-196页 |
| 博士期间发表的论文 | 第196-198页 |
| 致谢 | 第198页 |
