| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 1 绪论 | 第13-24页 |
| 1.1 课题背景 | 第13-14页 |
| 1.2 多糖研究概况 | 第14-22页 |
| 1.2.1 多糖提取分离与纯化 | 第15-17页 |
| 1.2.2 多糖的活性研究 | 第17-22页 |
| 1.3 轮叶党参多糖的研究进展 | 第22-24页 |
| 1.3.1 轮叶党参多糖的药理作用 | 第22页 |
| 1.3.2 轮叶党参多糖制备方法 | 第22-23页 |
| 1.3.3 研究目的意义及内容 | 第23-24页 |
| 2 轮叶党参多糖提取工艺的优化 | 第24-41页 |
| 2.1 试验材料与方法 | 第24-27页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第24-25页 |
| 2.1.2 试验方法 | 第25-27页 |
| 2.2 试验结果与分析 | 第27-39页 |
| 2.2.1 葡萄糖标准曲线的绘制 | 第27页 |
| 2.2.2 酶解条件对轮叶党参多糖得率的影响 | 第27-30页 |
| 2.2.3 Box-Behnken响应面优化酶解轮叶党参多糖提取工艺 | 第30-34页 |
| 2.2.4 超声波结合纤维素酶法对轮叶党参多糖得率的影响 | 第34-36页 |
| 2.2.5 Box-Behnken响应面优化超声波结合酶法提取轮叶党参多糖工艺 | 第36-39页 |
| 2.3 讨论 | 第39-40页 |
| 2.4 本章小结 | 第40-41页 |
| 3 轮叶党参多糖的分离纯化 | 第41-50页 |
| 3.1 试验材料与方法 | 第41-43页 |
| 3.1.1 试验材料 | 第41-42页 |
| 3.1.2 试验方法 | 第42-43页 |
| 3.2 结果与分析 | 第43-48页 |
| 3.2.1 轮叶党参粗多糖脱蛋白方法研究 | 第43-46页 |
| 3.2.2 轮叶党参多糖柱层析结果与分析 | 第46-48页 |
| 3.3 讨论 | 第48-49页 |
| 3.4 本章小结 | 第49-50页 |
| 4 轮叶党参多糖组分抗氧化性及其理化性质 | 第50-68页 |
| 4.1 试验材料与方法 | 第50-54页 |
| 4.1.1 试验材料 | 第50-51页 |
| 4.1.2 试验方法 | 第51-54页 |
| 4.2 结果与分析 | 第54-65页 |
| 4.2.1 对DPPH·的清除能力测定 | 第54-55页 |
| 4.2.2 对·OH清除能力测定 | 第55-56页 |
| 4.2.3 对ABTS~+的清除能力测定 | 第56页 |
| 4.2.4 对·O~(2-)清除能力测定 | 第56-57页 |
| 4.2.5 总还原力的测定 | 第57-58页 |
| 4.2.6 CLPS1溶解性 | 第58-60页 |
| 4.2.7 CLPS1水溶液粘度特性 | 第60-64页 |
| 4.2.8 CLPS1的分子形态 | 第64-65页 |
| 4.3 讨论 | 第65-66页 |
| 4.4 本章小结 | 第66-68页 |
| 5 CLPS1的结构初步分析 | 第68-82页 |
| 5.1 试验材料与方法 | 第68-72页 |
| 5.1.1 试验材料 | 第68-69页 |
| 5.1.2 试验方法 | 第69-72页 |
| 5.2 结果与分析 | 第72-80页 |
| 5.2.1 CLPS1比旋光度 | 第72页 |
| 5.2.2 糖醛酸含量测定 | 第72-73页 |
| 5.2.3 CLPS1分子量测定 | 第73页 |
| 5.2.4 气相色谱单糖组成分析 | 第73-74页 |
| 5.2.5 CLPS1的红外光谱分析 | 第74页 |
| 5.2.6 CLPS1的~1HNMR的分析 | 第74-75页 |
| 5.2.7 CLPS1的~(13)CNMR的分析 | 第75页 |
| 5.2.8 部分酸水解产物分析 | 第75-76页 |
| 5.2.9 CLPS1高碘酸氧化与Smith降解分析 | 第76-77页 |
| 5.2.10 甲基化与酯化分析 | 第77-80页 |
| 5.3 讨论 | 第80-81页 |
| 5.4 本章小结 | 第81-82页 |
| 6 CLPS1对D-半乳糖致衰老小鼠的作用研究 | 第82-89页 |
| 6.1 试验材料与方法 | 第82-83页 |
| 6.1.1 试验材料 | 第82页 |
| 6.1.2 试验方法 | 第82-83页 |
| 6.2 结果与分析 | 第83-87页 |
| 6.2.1 CLPS1对小鼠体重的影响 | 第83-84页 |
| 6.2.2 CLPS1对小鼠胸腺指数和脾脏指数的影响 | 第84页 |
| 6.2.3 CLPS1对小鼠组织及其血清中MDA含量的影响 | 第84-85页 |
| 6.2.4 CLPS1对小鼠组织及其血清中GSH-Px活性的影响 | 第85-86页 |
| 6.2.5 CLPS1对小鼠组织及其血清中SOD活性的影响 | 第86页 |
| 6.2.6 CLPS1对小鼠组织及其血清中CAT活性的影响 | 第86-87页 |
| 6.3 讨论 | 第87页 |
| 6.4 本章小结 | 第87-89页 |
| 7 CLPS1通过调控β1整合素信号通路抑制黑色素瘤转移 | 第89-98页 |
| 7.1 试验材料与方法 | 第89-91页 |
| 7.1.1 试验材料 | 第89-90页 |
| 7.1.2 试验方法 | 第90-91页 |
| 7.2 结果与分析 | 第91-95页 |
| 7.2.1 CLPS1抑制B16F10细胞转移和迁移的能力 | 第91-94页 |
| 7.2.2 CLPS1阻断β1整合素的功能和信号传导 | 第94-95页 |
| 7.3 讨论 | 第95-97页 |
| 7.4 本章小结 | 第97-98页 |
| 结论 | 第98-100页 |
| 参考文献 | 第100-109页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第109-110页 |
| 致谢 | 第110-112页 |
| 附件 | 第112-114页 |
