| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 1. 前言 | 第10-19页 |
| 1.1. 性腺的组织学分期 | 第11-12页 |
| 1.1.1. 硬骨鱼类卵母细胞发育分期 | 第11-12页 |
| 1.1.2. 卵巢发育分期 | 第12页 |
| 1.2. 卵母细胞成熟机制 | 第12-14页 |
| 1.2.1. 下丘脑－垂体－性腺( HPG）轴 | 第12-13页 |
| 1.2.2. 孕激素 | 第13-14页 |
| 1.3. 孕激素受体 | 第14-17页 |
| 1.4. 发展趋势 | 第17-18页 |
| 1.5. 本文研究目的和意义 | 第18-19页 |
| 2. 半滑舌鳎膜孕激素受体的表达和功能分析 | 第19-42页 |
| 2.1. 材料 | 第19-21页 |
| 2.1.1. 实验动物 | 第19-20页 |
| 2.1.2. 实验仪器 | 第20页 |
| 2.1.3. 试剂及耗材 | 第20-21页 |
| 2.2. 实验方法 | 第21-30页 |
| 2.2.1. HE染色石蜡切片 | 第21-22页 |
| 2.2.2. 总RNA提取 | 第22页 |
| 2.2.3. c DNA的合成 | 第22页 |
| 2.2.4. 荧光定量PCR（q RT-PCR） | 第22-23页 |
| 2.2.5. 半滑舌鳎m PRα／PBST-18质粒的构建 | 第23-25页 |
| 2.2.6. 地高辛标记m PRα正、反义RNA探针的合成和纯化 | 第25-26页 |
| 2.2.7. 原位杂交 | 第26-27页 |
| 2.2.8. Western blotting | 第27-28页 |
| 2.2.9. 免疫组化 | 第28-29页 |
| 2.2.10. 细胞培养 | 第29页 |
| 2.2.11. 数据统计分析 | 第29-30页 |
| 2.3. 结果 | 第30-40页 |
| 2.3.1. 半滑舌鳎在不同发育期的不同时相卵母细胞中的表达 | 第30-32页 |
| 2.3.2. 半滑舌鳎m PRα在不同组织中的表达特征 | 第32-40页 |
| 2.4. 讨论 | 第40-42页 |
| 2.4.1. m PRα在半滑舌鳎不同时相卵母细胞中的作用 | 第40页 |
| 2.4.2. 促性腺激素调控m PRα生理功能 | 第40-41页 |
| 2.4.3. m PRα在不同组织中的生理功能 | 第41-42页 |
| 3. 半滑舌鳎新型膜孕激素受体的表达和功能分析 | 第42-59页 |
| 3.1. 材料 | 第42-43页 |
| 3.1.1. 实验动物 | 第42页 |
| 3.1.2. 实验仪器 | 第42页 |
| 3.1.3. 试剂及耗材 | 第42-43页 |
| 3.2. 方法 | 第43-45页 |
| 3.2.1. 实时荧光定量PCR（q RT-PCR） | 第43页 |
| 3.2.2. 舌鳎鱼m PRL／PBST-18质粒的构建 | 第43-44页 |
| 3.2.3. 地高辛标记m PRα正、反义RNA探针的合成和纯化 | 第44页 |
| 3.2.4. 原位杂交 | 第44页 |
| 3.2.5. Western blotting | 第44页 |
| 3.2.6. 免疫组化 | 第44-45页 |
| 3.2.7. 细胞培养 | 第45页 |
| 3.2.8. 数据统计分析 | 第45页 |
| 3.3. 结果 | 第45-56页 |
| 3.3.1. 不同时相卵母细胞m PRL的表达特征 | 第45-48页 |
| 3.3.2. 半滑舌鳎m PRL在不同组织中的表达特征 | 第48-56页 |
| 3.4. 讨论 | 第56-59页 |
| 3.4.1. m PRL在半滑舌鳎不同时相卵母细胞中的作用 | 第56页 |
| 3.4.2. 促性腺激素调控m PRL生理功能 | 第56-57页 |
| 3.4.3. m PRL在半滑舌鳎不同组织中的生理功能 | 第57-59页 |
| 4. 牙鲆膜孕激素受体的表达和功能分析 | 第59-73页 |
| 4.1. 材料 | 第59-60页 |
| 4.1.1. 实验动物 | 第59-60页 |
| 4.1.2. 实验仪器 | 第60页 |
| 4.1.3. 试剂及耗材 | 第60页 |
| 4.2. 方法 | 第60-62页 |
| 4.2.1. 总RNA提取 | 第60页 |
| 4.2.2. c DNA第一链合成 | 第60页 |
| 4.2.3. 实时荧光定量PCR（q RT-PCR） | 第60-61页 |
| 4.2.4. 牙鲆m PRα／PBST-18质粒的构建 | 第61-62页 |
| 4.2.5. 地高辛标记m PRα正、反义RNA探针的合成和纯化 | 第62页 |
| 4.2.6. 原位杂交 | 第62页 |
| 4.2.7. Western blotting | 第62页 |
| 4.2.8. 免疫组化 | 第62页 |
| 4.2.9. 数据统计分析 | 第62页 |
| 4.3. 结果 | 第62-70页 |
| 4.3.1. 不同时相卵母细胞m PRα的表达特征 | 第62-63页 |
| 4.3.2. 牙鲆m PRα在不同组织中的表达特征 | 第63-70页 |
| 4.4. 讨论 | 第70-73页 |
| 4.4.1. m PRα在不同时相卵母细胞中的作用 | 第71页 |
| 4.4.2. m PRα在牙鲆不同组织中的生理功能 | 第71-73页 |
| 5. 牙鲆新型膜孕激素受体的表达和功能分析 | 第73-85页 |
| 5.1. 材料 | 第73-74页 |
| 5.1.1. 实验动物 | 第73页 |
| 5.1.2. 实验仪器 | 第73页 |
| 5.1.3. 试剂及耗材 | 第73-74页 |
| 5.2. 方法 | 第74-76页 |
| 5.2.1. 实时荧光定量PCR（q RT-PCR） | 第74页 |
| 5.2.2. 牙鲆m PRL／PBST-18质粒的构建 | 第74-75页 |
| 5.2.3. 地高辛标记m PRL正、反义RNA探针的合成和纯化 | 第75页 |
| 5.2.4. 原位杂交 | 第75页 |
| 5.2.5. Western blotting | 第75页 |
| 5.2.6. 免疫组化 | 第75页 |
| 5.2.7. 数据统计分析 | 第75-76页 |
| 5.3. 结果 | 第76-83页 |
| 5.3.1. 牙鲆成熟期卵母细胞不同时相m PRL的表达特征 | 第76页 |
| 5.3.2. 牙鲆m PRL组织表达特征 | 第76-83页 |
| 5.4. 讨论 | 第83-85页 |
| 5.4.1. m PRL在不同时相卵母细胞中的作用 | 第83页 |
| 5.4.2. m PRL在不同组织中的生理功能 | 第83-85页 |
| 6. 小结 | 第85-86页 |
| 参考文献 | 第86-94页 |
| 附录 | 第94-96页 |
| 攻读硕士学位期间撰写的文章 | 第96-97页 |
| 致谢 | 第97-99页 |
