| 摘要 | 第3-4页 |
| ABSTRACT | 第4-5页 |
| 第一章 植物多糖及玉米须多糖的研究进展 | 第9-21页 |
| 1.1 植物多糖的提取分离和纯化 | 第9-13页 |
| 1.1.1 传统方法 | 第9页 |
| 1.1.2 超声波辅助法 | 第9-10页 |
| 1.1.3 微波协助萃取法 | 第10页 |
| 1.1.4 超临界流体萃取法 | 第10页 |
| 1.1.5 超滤法 | 第10-11页 |
| 1.1.6 植物多糖的纯化 | 第11-13页 |
| 1.2 多糖的一级结构与生物活性的关系 | 第13-14页 |
| 1.2.1 糖单元的组成 | 第13页 |
| 1.2.2 糖苷键的类型 | 第13-14页 |
| 1.2.3 支链构型 | 第14页 |
| 1.3 多糖的高级结构对生物活性的影响 | 第14-15页 |
| 1.4 多糖的生物活性 | 第15-17页 |
| 1.4.1 免疫调节作用 | 第15页 |
| 1.4.2 降血糖作用 | 第15-16页 |
| 1.4.3 抗肿瘤活性 | 第16页 |
| 1.4.4 抗病毒作用 | 第16-17页 |
| 1.4.5 其他活性 | 第17页 |
| 1.5 玉米须的研究进展 | 第17-19页 |
| 1.5.1 多糖类 | 第17-18页 |
| 1.5.2 黄酮类 | 第18页 |
| 1.5.3 甾醇类 | 第18-19页 |
| 1.5.5 挥发性成分 | 第19页 |
| 1.5.6 矿质元素 | 第19页 |
| 1.6 课题构想 | 第19-21页 |
| 1.6.1 课题目的及意义 | 第19-20页 |
| 1.6.2 主要内容 | 第20-21页 |
| 第二章 玉米须多糖的理化性质及其构效关系的研究 | 第21-39页 |
| 2.1 引言 | 第21页 |
| 2.2 材料与仪器 | 第21-23页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第21页 |
| 2.2.2 实验试剂 | 第21-22页 |
| 2.2.3 实验仪器 | 第22-23页 |
| 2.3 实验方法 | 第23-28页 |
| 2.3.1 玉米须多糖 CSPS 的热水提取法的制备 | 第23页 |
| 2.3.2 玉米须多糖 CSPS 的分离纯化 | 第23-24页 |
| 2.3.3 玉米须多糖 CSPS-2 的化学修饰 | 第24页 |
| 2.3.4 CSPS-2 及化学修饰衍生物的取代度测定 | 第24-25页 |
| 2.3.5 CSPS-2 及化学修饰衍生物的组成成分分析 | 第25-26页 |
| 2.3.6 CSPS-2 及化学修饰衍生物的分子量测定 | 第26页 |
| 2.3.7 CSPS-2 及化学修饰衍生物的特性粘度分析 | 第26-27页 |
| 2.3.8 CSPS-2 及化学修饰衍生物的红外光谱分析 | 第27页 |
| 2.3.9 CSPS-2 及化学修饰衍生物的形态学分析 | 第27页 |
| 2.3.10 CSPS-2 及化学修饰衍生物的构象分析 | 第27页 |
| 2.3.11 CSPS-2 及化学修饰衍生物的抗氧化活性测定 | 第27-28页 |
| 2.3.12 CSPS-2 及化学修饰衍生物的抑制α-淀粉酶活性测定 | 第28页 |
| 2.4 实验结果与讨论 | 第28-39页 |
| 2.4.1 玉米须多糖 CSPS 的分离纯化 | 第28-29页 |
| 2.4.2 N-CSPS 及其衍生物的化学成分和单糖组成分析 | 第29-30页 |
| 2.4.3 N-CSPS 及其衍生物的取代度、分子量测定和粘度分析 | 第30页 |
| 2.4.4 N-CSPS 及其衍生物的红外光谱分析 | 第30-31页 |
| 2.4.5 N-CSPS 及其衍生物的形态学分析 | 第31-33页 |
| 2.4.6 N-CSPS 及其衍生物的构象分析 | 第33-35页 |
| 2.4.7 N-CSPS 及其衍生物的抗氧化活性测定结果 | 第35-37页 |
| 2.4.8 N-CSPS 及其衍生物的抑制α-淀粉酶活性测定结果 | 第37-39页 |
| 第三章 乙醇分级多糖的理化性质与活性的比较研究 | 第39-53页 |
| 3.1 引言 | 第39页 |
| 3.2 材料与仪器 | 第39-41页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第39页 |
| 3.2.2 实验试剂 | 第39-40页 |
| 3.2.3 实验仪器 | 第40-41页 |
| 3.3 实验方法 | 第41-43页 |
| 3.3.1 玉米须多糖 CSPS 的热水提取法的制备及其分级醇沉 | 第41页 |
| 3.3.2 CSPS 乙醇分级成分的化学组成和粘度测定 | 第41页 |
| 3.3.3 CSPS 乙醇分级成分的抗氧化活性筛选 | 第41页 |
| 3.3.4 CSPS 乙醇分级成分 CSPS-45 和 CSPS-80 的分离纯化 | 第41页 |
| 3.3.5 CSPS-45-2 和 CSPS-80-2 的羧甲基化修饰 | 第41-42页 |
| 3.3.6 羧甲基化 CSPS-45-2 和 CSPS-80-2 的化学组成、取代度、粘度和分子量测定 | 第42页 |
| 3.3.7 羧甲基化 CSPS-45-2 和 CSPS-80-2 的红外光谱分析 | 第42页 |
| 3.3.8 羧甲基化 CSPS-45-2 和 CSPS-80-2 的形态学分析 | 第42页 |
| 3.3.9 羧甲基化 CSPS-45-2 和 CSPS-80-2 的构象测定 | 第42页 |
| 3.3.10 羧甲基化 CSPS-45-2 和 CSPS-80-2 的抗氧化活性测定 | 第42-43页 |
| 3.4 实验结果与讨论 | 第43-53页 |
| 3.4.1 玉米须多糖 CSPS 乙醇分级成分的化学组成和粘度测定 | 第43页 |
| 3.4.2 玉米须多糖 CSPS 乙醇分级成分的抗氧化活性筛选 | 第43-45页 |
| 3.4.3 玉米须多糖 CSPS 乙醇分级成分 CSPS-45 和 CSPS-80 的分离纯化 | 第45页 |
| 3.4.4 羧甲基化 CSPS-45-2 和 CSPS-80-2 的化学组成、取代度、粘度和分子量测定 | 第45-46页 |
| 3.4.5 羧甲基化 CSPS-45-2 和 CSPS-80-2 的红外光谱分析 | 第46-47页 |
| 3.4.6 羧甲基化 CSPS-45-2 和 CSPS-80-2 的形态学分析 | 第47-48页 |
| 3.4.7 羧甲基化 CSPS-45-2 和 CSPS-80-2 的构象测定 | 第48-50页 |
| 3.4.8 羧甲基化 CSPS-45-2 和 CSPS-80-2 的抗氧化活性测定 | 第50-53页 |
| 第四章 热水提取和酶解-超声联合提取玉米须多糖的理化性质和活性的比较研究 | 第53-70页 |
| 4.1 引言 | 第53页 |
| 4.2 材料与仪器 | 第53-55页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第53页 |
| 4.2.2 实验试剂 | 第53-54页 |
| 4.2.3 实验仪器 | 第54-55页 |
| 4.3 实验方法 | 第55-57页 |
| 4.3.1 玉米须多糖 CSPS 的热水提取法的制备 | 第55页 |
| 4.3.2 玉米须多糖 CSPS 的酶解-超声法的制备 | 第55-56页 |
| 4.3.3 PS 和 EUPS 的分离纯化 | 第56页 |
| 4.3.4 PS 和 EUPS 的组成成分分析 | 第56页 |
| 4.3.5 PS 和 EUPS 的分子量测定 | 第56页 |
| 4.3.6 PS 和 EUPS 的红外光谱分析 | 第56-57页 |
| 4.3.7 PS 和 EUPS 的形态学分析 | 第57页 |
| 4.3.8 PS 和 EUPS 的构象分析 | 第57页 |
| 4.3.9 PS 和 EUPS 的抗氧化活性测定 | 第57页 |
| 4.3.10 PS 和 EUPS 的抗癌活性测定 | 第57页 |
| 4.4 实验结果与讨论 | 第57-70页 |
| 4.4.1 酶解前处理实验结果 | 第57-58页 |
| 4.4.2 响应面统计分析和二次多项式模型拟合 | 第58-62页 |
| 4.4.3 PS 和 EUPS 的分离纯化 | 第62页 |
| 4.4.4 PS-2 和 EUPS-2 的组成成分分析 | 第62-63页 |
| 4.4.5 PS-2 和 EUPS-2 的分子量测定 | 第63页 |
| 4.4.6 PS-2 和 EUPS-2 的红外光谱分析 | 第63-64页 |
| 4.4.7 PS-2 和 EUPS-2 的形态学分析 | 第64-65页 |
| 4.4.8 PS-2 和 EUPS-2 的构象分析 | 第65-66页 |
| 4.4.9 PS-2 和 EUPS-2 的抗氧化活性测定结果 | 第66-68页 |
| 4.4.10 PS-2 和 EUPS-2 的抗癌活性测定结果 | 第68-70页 |
| 第五章 结论和展望 | 第70-72页 |
| 参考文献 | 第72-79页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第79-80页 |
| 致谢 | 第80页 |
