| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略语/符号说明 | 第10-11页 |
| 前言 | 第11-13页 |
| 研究现状、成果 | 第11-12页 |
| 研究目的、方法 | 第12-13页 |
| 一、高糖环境单核细胞源性微囊泡参与高凝状态的机制 | 第13-25页 |
| 1.1 研究对象和材料 | 第13-14页 |
| 1.1.1 研究对象 | 第13页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第13页 |
| 1.1.3 主要仪器设备 | 第13-14页 |
| 1.1.4 主要试剂配方 | 第14页 |
| 1.2 实验方法 | 第14-20页 |
| 1.2.1 单核细胞的培养 | 第14-15页 |
| 1.2.2 实验分组 | 第15-16页 |
| 1.2.3 流式细胞仪检测线粒体超氧化物变化 | 第16页 |
| 1.2.4 MV的分离和纯化 | 第16页 |
| 1.2.5 MV测定 | 第16-18页 |
| 1.2.6 MV促凝血活性的测定 | 第18页 |
| 1.2.7 统计学分析 | 第18-20页 |
| 1.3 实验结果 | 第20-22页 |
| 1.3.1 高糖对THP-1细胞线粒体产生超氧化物的影响 | 第20-21页 |
| 1.3.2 P38抑制剂干预对高糖刺激THP-1产生MV的影响 | 第21页 |
| 1.3.3 高糖刺激单核细胞产生MV表达TF及P38抑制剂的影响 | 第21-22页 |
| 1.4 讨论 | 第22-24页 |
| 1.4.1 高糖刺激MV产生与线粒体氧化应激 | 第22-23页 |
| 1.4.2 高糖刺激MV产生与P38/MAPK通路 | 第23-24页 |
| 1.4.3 高糖刺激MV产生与糖尿病高凝状态 | 第24页 |
| 1.5 小结 | 第24-25页 |
| 二、单核细胞源性微囊泡对系膜细胞的影响 | 第25-37页 |
| 2.1 研究对象和材料 | 第25-27页 |
| 2.1.1 研究对象 | 第25页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第25页 |
| 2.1.3 主要试剂配置 | 第25-27页 |
| 2.1.4 主要仪器和设备 | 第27页 |
| 2.2 实验方法 | 第27-32页 |
| 2.2.1 肾小球系膜细胞的细胞培养 | 第27页 |
| 2.2.2 实验分组 | 第27-28页 |
| 2.2.3 检测HRMC蛋白表达 | 第28-31页 |
| 2.2.4 统计学分析 | 第31-32页 |
| 2.3 实验结果 | 第32-33页 |
| 2.3.1 高糖刺激THP-1细胞源性MV对HRMC细胞VEGF表达的影响 | 第32页 |
| 2.3.2 高糖刺激THP-1细胞源性MV对HRMC细胞HIF1a表达的影响 | 第32-33页 |
| 2.4 讨论 | 第33-36页 |
| 2.4.1 VEGF与糖尿病肾病 | 第33-34页 |
| 2.4.2 HIF1a与糖尿病肾病 | 第34-35页 |
| 2.4.3 单核细胞源性MV在糖尿病肾病中的作用 | 第35-36页 |
| 2.5 小结 | 第36-37页 |
| 结论 | 第37-38页 |
| 参考文献 | 第38-47页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第47-48页 |
| 综述 | 第48-63页 |
| 综述参考文献 | 第55-63页 |
| 致谢 | 第63页 |
