摘要 | 第4-7页 |
abstract | 第7-11页 |
符号说明 | 第15-16页 |
引言 | 第16-18页 |
第一部分 :野生型小鼠和AD小鼠肠道微生物的差异分析 | 第18-30页 |
前言 | 第18-19页 |
1.1 材料与方法 | 第19-22页 |
1.1.1 主要仪器及试剂 | 第19页 |
1.1.2 AD小鼠的鉴定 | 第19页 |
1.1.3 小鼠的分组、粪便样品的收集 | 第19-20页 |
1.1.4 基因组DNA的提取和PCR扩增 | 第20页 |
1.1.5 PCR产物的混样和纯化 | 第20页 |
1.1.6 文库构建和上机测序 | 第20页 |
1.1.7 测序数据处理 | 第20页 |
1.1.8 OTU聚类和物种注释 | 第20-21页 |
1.1.9 样品复杂度分析(AlphaDiversity) | 第21页 |
1.1.10 多样品比较分析(BetaDiversity) | 第21-22页 |
1.2 结果 | 第22-27页 |
1.2.1 APP+转基因小鼠的鉴定 | 第22页 |
1.2.2 数据统计处理及OTU聚类结果 | 第22-23页 |
1.2.3 物种相对丰度 | 第23-24页 |
1.2.4 Alpha多样性分析 | 第24-25页 |
1.2.5 LEfSe(LDAEffectSize)分析组间群落结构差异 | 第25-27页 |
1.3 讨论 | 第27-29页 |
1.4 小结 | 第29-30页 |
第二部分 :粪菌移植对AD小鼠的影响 | 第30-54页 |
前言 | 第30-31页 |
2.1 材料与方法 | 第31-40页 |
2.1.1 主要仪器及试剂 | 第31-32页 |
2.1.2 Morris水迷宫行为学检测 | 第32-33页 |
2.1.3 小鼠SOD活力的测定 | 第33页 |
2.1.4 WesternBlotting检测相关蛋白的表达 | 第33-35页 |
2.1.5 qRT-PCR检测相关基因的表达 | 第35-36页 |
2.1.6 冰冻切片 | 第36-37页 |
2.1.7 免疫荧光 | 第37页 |
2.1.8 刚果红染色 | 第37-38页 |
2.1.9 粪便样品的搜集及粪菌液的制备 | 第38页 |
2.1.10 粪菌移植 | 第38页 |
2.1.11 粪菌移植期间小鼠体重测定 | 第38页 |
2.1.12 主要仪器及试剂 | 第38页 |
2.1.13 小鼠的分组、每组小鼠粪便的收集 | 第38-39页 |
2.1.14 基因组DNA的提取和PCR扩增 | 第39页 |
2.1.15 PCR产物的混样和纯化 | 第39页 |
2.1.16 文库构建和上机测序 | 第39页 |
2.1.17 测序数据处理 | 第39页 |
2.1.18 OTU聚类和物种注释 | 第39页 |
2.1.19 样品复杂度分析(AlphaDiversity) | 第39页 |
2.1.20 多样品比较分析(BetaDiversity) | 第39页 |
2.1.21 数据处理与统计分析 | 第39-40页 |
2.2 实验结果与分析 | 第40-49页 |
2.2.1 Morris水迷宫检测AD小鼠(1month、3month、6month、12month)学习记忆能力. | 第40-41页 |
2.2.2 粪菌移植后WT、AD3m、FMT三组小鼠肠道微生物分析 | 第41-44页 |
2.2.2.1 下机数据统计处理及OTU聚类结果 | 第41-42页 |
2.2.2.2 物种相对丰度展示 | 第42-44页 |
2.2.3 App~-、App~+、FMT三组小鼠体重变化情况及Morris水迷宫实验结果 | 第44-45页 |
2.2.4 App~-、App~+、FMT三组小鼠血清中SOD活性及MDA含量的测定 | 第45-46页 |
2.2.5 App~-、App~+、FMT三组小鼠炎性相关因子表达情况 | 第46-47页 |
2.2.6 App~-、App~+、FMT三组小鼠脑组织中神经营养因子的相对表达情况 | 第47页 |
2.2.7 App~-、App~+、FMT三组小鼠脑组织衰老相关蛋白的相对表达量比较 | 第47-48页 |
2.2.8 App~-、App~+、FMT三组小鼠脑组织中APP和Aβ淀粉样蛋白沉积情况 | 第48-49页 |
2.3 讨论 | 第49-53页 |
2.4 小结 | 第53-54页 |
全文总结 | 第54-55页 |
参考文献 | 第55-59页 |
综述 微生物-脑-肠轴和神经退行性疾病 | 第59-73页 |
参考文献 | 第66-73页 |
个人简历及硕士期间发表学术论文 | 第73-74页 |
致谢 | 第74页 |