| 摘要 | 第3-7页 |
| ABSTRACT | 第7-11页 |
| 英文缩写及全文和中文对照表 | 第14-15页 |
| 第1章 引言 | 第15-18页 |
| 技术路线 | 第18-19页 |
| 第2章 材料与仪器 | 第19-23页 |
| 2.1 实验动物 | 第19页 |
| 2.2 实验细胞 | 第19页 |
| 2.3 实验试剂 | 第19-20页 |
| 2.3.1 主要购置试剂 | 第19-20页 |
| 2.3.2 主要配置试剂 | 第20页 |
| 2.4 实验仪器 | 第20-21页 |
| 2.5 动静脉导管制备 | 第21-23页 |
| 第3章 方法 | 第23-28页 |
| 3.1 实验思路 | 第23页 |
| 3.2 C. capillata 采集与 TE 获取 | 第23页 |
| 3.3 HUVEC 细胞培养 | 第23-24页 |
| 3.4 检测 TE 对 HUVEC 的毒性作用 | 第24-25页 |
| 3.4.1 MTT 检测 HUVEC 细胞存活率 | 第24页 |
| 3.4.2 流式细胞技术检测 HUVEC 细胞凋亡 | 第24-25页 |
| 3.5 ELISA 法检测血管舒缩因子 PGI2、TXA2、AngⅡ分泌量 | 第25-26页 |
| 3.6 SD 大鼠动脉 BP 监测观察 VEC 的生物学效应及拮抗药物的干预效果 | 第26-27页 |
| 3.7 心肌酶（LDH、CK）、肾功能（sCr、BUN）检测 | 第27页 |
| 3.8 统计学处理 | 第27-28页 |
| 第4章 实验结果 | 第28-39页 |
| 4.1 MTT 法检测细胞存活率 | 第28-30页 |
| 4.1.1 不同浓度 TE 作用对 HUVEC 细胞存活率的影响 | 第28-29页 |
| 4.1.2 不同浓度、不同时间 TE 作用对 HUVEC 细胞存活率的影响 | 第29-30页 |
| 4.2 Annexin V-PI 双染检测细胞凋亡 | 第30-32页 |
| 4.3 ELISA 法检测血管舒缩因子 PGI2、TXA2、AngⅡ分泌量 | 第32-35页 |
| 4.3.1 检测不同浓度 TE 作用 HUVEC 细胞后 PGI2、TXA2、AngⅡ分泌量 | 第32-34页 |
| 4.3.2 检测同一浓度 TE 不同作用时间 HUVEC 细胞 PGI2、TXA2、AngⅡ分泌量 | 第34-35页 |
| 4.4 SD 大鼠动脉 BP 监测观察 VEC 的体内效应及拮抗药物的干预效果 | 第35-37页 |
| 4.5 SD 大鼠心、肾功能生化指标检测 | 第37-39页 |
| 第5章 讨论 | 第39-44页 |
| 5.1 血管内皮细胞在发形霞水母毒素毒性反应中的屏障保护作用 | 第39-40页 |
| 5.2 血管内皮细胞在水母毒素反应中对血管舒缩因子分泌量的调节 | 第40-42页 |
| 5.3 VECs 抗 TE 缩血管毒性反应的效应及初步药物筛选 | 第42-44页 |
| 第6章 结论与展望 | 第44-45页 |
| 6.1 结论 | 第44页 |
| 6.2 展望 | 第44-45页 |
| 致谢 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-49页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第49-50页 |
| 综述 | 第50-56页 |
| 摘要 | 第50-55页 |
| 参考文献 | 第55-56页 |
