| 摘要 | 第4-10页 |
| abstract | 第10-18页 |
| 引言 | 第23-25页 |
| 第一部分 肿瘤化HUVEC疫苗抗小鼠结直肠癌血管生成的作用 | 第25-57页 |
| 前言 | 第25-26页 |
| 1 实验材料 | 第26-36页 |
| 1.1 细胞系 | 第26页 |
| 1.2 主要实验试剂和试剂盒 | 第26-27页 |
| 1.3 主要仪器 | 第27-28页 |
| 1.4 实验耗材 | 第28-29页 |
| 1.5 主要试剂配制 | 第29-36页 |
| 2 实验方法 | 第36-46页 |
| 2.1 细胞的培养 | 第36-37页 |
| 2.2 肿瘤化HUVEC疫苗的制备 | 第37-38页 |
| 2.3 细胞划痕实验 | 第38-39页 |
| 2.4 细胞侵袭实验 | 第39页 |
| 2.5 蛋白质免疫印迹实验 | 第39-41页 |
| 2.6 Q-PCR检测mRNA水平的变化 | 第41-42页 |
| 2.7 动物饲养 | 第42页 |
| 2.8 动物实验分组及免疫接种流程 | 第42-43页 |
| 2.9 对移植瘤小鼠的观察 | 第43页 |
| 2.10 血红蛋白测定 | 第43页 |
| 2.11 ELISA检测小鼠血清中HUVEC抗体的含量 | 第43-44页 |
| 2.12 免疫组织化学 | 第44-45页 |
| 2.13 统计方法 | 第45-46页 |
| 3 实验结果 | 第46-53页 |
| 3.1 模拟结直肠癌微环境,研究其对HUVEC的影响 | 第46-49页 |
| 3.2 肿瘤化HUVEC疫苗对小鼠结直肠移植瘤的抑制作用 | 第49-50页 |
| 3.3 肿瘤化HUVEC疫苗抑制小鼠结直肠癌的机制 | 第50-53页 |
| 4 讨论 | 第53-57页 |
| 第二部分 肿瘤化HUVEC疫苗联合DC-CT26疫苗抗小鼠结直肠癌移植瘤的作用 | 第57-75页 |
| 前言 | 第57页 |
| 1 实验材料 | 第57-59页 |
| 1.1 细胞系 | 第57-58页 |
| 1.2 主要试剂 | 第58页 |
| 1.3 主要仪器 | 第58页 |
| 1.4 主要试剂的配制 | 第58-59页 |
| 2 实验方法 | 第59-64页 |
| 2.1 动物饲养 | 第59页 |
| 2.2 小鼠骨髓源树突状细胞的培养 | 第59-60页 |
| 2.3 CT26细胞冻融抗原的制备 | 第60页 |
| 2.4 DC-CT26抗原的制备 | 第60页 |
| 2.5 动物实验分组及免疫接种流程 | 第60-61页 |
| 2.6 对移植瘤小鼠的观察 | 第61页 |
| 2.7 组织总蛋白的提取 | 第61页 |
| 2.8 CTL对CT26细胞的杀伤作用 | 第61-62页 |
| 2.9 ELISA法检测小鼠血清中IFN-γ的浓度 | 第62-63页 |
| 2.10 流式细胞术检测脾脏中CD3+CD8+T淋巴细胞的含量 | 第63页 |
| 2.11 WesternBlot操作步骤同第一部分 | 第63页 |
| 2.12 免疫组化操作步骤同第一部分 | 第63页 |
| 2.13 血红蛋白测定骤同第一部分 | 第63-64页 |
| 3 实验结果 | 第64-70页 |
| 3.1 联合疫苗对小鼠结直肠癌移植瘤的抑制作用 | 第64-65页 |
| 3.2 联合疫苗抑制小鼠结直肠癌移植瘤的机制 | 第65-70页 |
| 4 讨论 | 第70-74页 |
| 5 结论 | 第74-75页 |
| 参考文献 | 第75-80页 |
| 综述 | 第80-92页 |
| 参考文献 | 第88-92页 |
| 个人简历 | 第92-93页 |
| 致谢 | 第93页 |
