| 摘要 | 第3-6页 |
| ABSTRACT | 第6-9页 |
| 中英文缩略词表 | 第12-13页 |
| 第1章 引言 | 第13-16页 |
| 第2章 材料与方法 | 第16-32页 |
| 2.1 实验材料 | 第16-18页 |
| 2.1.1 细胞 | 第16页 |
| 2.1.2 主要试剂及耗材 | 第16-17页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第17-18页 |
| 2.2 实验方法 | 第18-31页 |
| 2.2.1 实验器材的前期准备 | 第18-19页 |
| 2.2.2 相关液体的配制 | 第19-22页 |
| 2.2.3 H9C2细胞的体外培养 | 第22-23页 |
| 2.2.4 细胞计数法摸索姜黄素干预高糖抑制H9C2心肌细胞增殖的最佳浓度及时间 | 第23页 |
| 2.2.5 CCK-8法摸索姜黄素干预高糖抑制H9C2心肌细胞活性的最佳浓度及时间 | 第23页 |
| 2.2.6 实验分组 | 第23-24页 |
| 2.2.7 CCK-8检测各组H9C2细胞活性 | 第24页 |
| 2.2.8 ELISA法检测各组细胞上清中IL6、TNFα、MCP1的含量 | 第24-26页 |
| 2.2.9 qRT-PCR检测各组H9C2细胞LXRα、IRAK4、PP2Ac mRNA水平 | 第26-28页 |
| 2.2.10 Western blot检测各组H9C2细胞LXRα、IRAK4、p-PP2Ac、NF-κBp65蛋白的表达 | 第28-31页 |
| 2.3 统计学分析 | 第31-32页 |
| 第3章 结果 | 第32-48页 |
| 3.1 H9C2细胞的生长特点 | 第32页 |
| 3.2 CCK-8和细胞计数法摸索姜黄素最佳干预时间和浓度 | 第32-33页 |
| 3.3 CCK-8法检测各组H9C2心肌细胞增殖情况 | 第33-34页 |
| 3.4 ELISA法检测各组细胞上清中IL6、TNFα、MCP1的含量 | 第34-36页 |
| 3.5 不同干预条件对心肌细胞LXRα、TLR-NF-κB通路的影响 | 第36-40页 |
| 3.5.1 qRT-PCR检测不同药物干预对H9C2细胞LXRα和IRAK4 mRNA水平的影响 | 第36-38页 |
| 3.5.2 Western blot检测不同药物干预H9C2细胞NF-κB p65、LXRα和IRAK4蛋白表达的影响 | 第38-40页 |
| 3.6 姜黄素改善心肌细胞炎症反应 | 第40-48页 |
| 3.6.1 姜黄素调控LXRa的表达 | 第40-43页 |
| 3.6.2 姜黄素调控PP2Ac的表达 | 第43-46页 |
| 3.6.3 Western blot检测各组细胞核内NF-κB p65蛋白表达 | 第46-48页 |
| 第4章 讨论 | 第48-54页 |
| 4.1 姜黄素对高糖诱导的心肌细胞增殖活力的影响 | 第49页 |
| 4.2 姜黄素对高糖诱导的心肌细胞炎症因子的影响 | 第49-50页 |
| 4.3 姜黄素对高糖活化NF-KB信号通路的影响 | 第50-51页 |
| 4.4 姜黄素对高糖作用下心肌细胞LXRs的影响 | 第51-52页 |
| 4.5 姜黄素对高糖诱导下心肌细胞内蛋白激酶和磷酸化酶的影响 | 第52-53页 |
| 4.6 姜黄素的临床应用前景 | 第53-54页 |
| 第5章 结论与展望 | 第54-55页 |
| 5.1 结论 | 第54页 |
| 5.2 展望与不足 | 第54-55页 |
| 致谢 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-60页 |
| 综述 | 第60-68页 |
| 参考文献 | 第66-68页 |
