| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 第一章 前言 | 第12-48页 |
| 1.1 酶的固定化 | 第12-28页 |
| 1.1.1 酶的固定化方法 | 第13-15页 |
| 1.1.1.1 酶与载体直接结合法 | 第14页 |
| 1.1.1.2 包埋法 | 第14-15页 |
| 1.1.1.3 交联法 | 第15页 |
| 1.1.2 酶的固定化载体 | 第15-22页 |
| 1.1.2.1 有机材料 | 第15-17页 |
| 1.1.2.2 无机材料 | 第17-19页 |
| 1.1.2.3 复合材料 | 第19-20页 |
| 1.1.2.4 载体材料表面性能对固定化酶性能的影响 | 第20-22页 |
| 1.1.3 固定化酶催化合成生物可降解医用高分子材料 | 第22-28页 |
| 1.1.3.1 固定化酶催化环状单体开环均聚反应研究 | 第23-26页 |
| 1.1.3.2 固定化酶催化环状单体共聚反应研究 | 第26-28页 |
| 1.2 离子液体 | 第28-35页 |
| 1.2.1 离子液体概述 | 第28-29页 |
| 1.2.2 离子液体在化学反应中的应用 | 第29-32页 |
| 1.2.2.1 离子液体中的自由基聚合反应研究 | 第29-30页 |
| 1.2.2.2 离子液体中的配位聚合反应研究 | 第30页 |
| 1.2.2.3 离子液体中的缩合聚合反应研究 | 第30-31页 |
| 1.2.2.4 离子液体中的开环聚合反应研究 | 第31-32页 |
| 1.2.3 离子液体对酶活性及热稳定性的影响 | 第32-34页 |
| 1.2.4 离子液体中的酶促开环聚合反应 | 第34-35页 |
| 1.3 选题背景与选题意义 | 第35-36页 |
| 参考文献 | 第36-48页 |
| 第二章 不同表面结构载体的制备及用于猪胰脂肪酶的固定化 | 第48-66页 |
| 2.1 引言 | 第48-49页 |
| 2.2 实验部分 | 第49-55页 |
| 2.2.1 试剂及仪器 | 第49-50页 |
| 2.2.2 固定化载体的制备 | 第50-52页 |
| 2.2.2.1 多孔硅球的活化 | 第50-51页 |
| 2.2.2.2 固定化载体PSP-1的制备 | 第51页 |
| 2.2.2.3 固定化载体PSP-2的制备 | 第51页 |
| 2.2.2.4 固定化载体PSP-3的制备 | 第51-52页 |
| 2.2.2.5 固定化载体PSP-4的制备 | 第52页 |
| 2.2.2.6 固定化载体PSP-5的制备 | 第52页 |
| 2.2.3 固定化酶的制备 | 第52-53页 |
| 2.2.4 固定化酶活力的测定 | 第53-54页 |
| 2.2.5 载体表面反应性功能基团含量的测定 | 第54-55页 |
| 2.2.5.1 载体表面氨基含量的测定 | 第54页 |
| 2.2.5.2 载体表面环氧基团含量的测定 | 第54-55页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第55-61页 |
| 2.3.1 固定化载体的制备 | 第55-59页 |
| 2.3.2 固定化酶的制备 | 第59-61页 |
| 2.4 小结 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-66页 |
| 第三章 离子液体中IPPL催化ε-己内酯的开环聚合反应研究 | 第66-80页 |
| 3.1 引言 | 第66-67页 |
| 3.2 实验部分 | 第67-69页 |
| 3.2.1 试剂及仪器 | 第67-68页 |
| 3.2.2 离子液体中ε-CL的酶促开环聚合 | 第68页 |
| 3.2.3 固定化酶的高温稳定性研究 | 第68-69页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第69-76页 |
| 3.3.1 聚合温度对酶促聚合反应的影响 | 第69-71页 |
| 3.3.2 聚合时间对酶促聚合反应的影响 | 第71-72页 |
| 3.3.3 固定化酶用量对酶促聚合反应的影响 | 第72-73页 |
| 3.3.4 离子液体用量对酶促聚合反应的影响 | 第73-75页 |
| 3.3.5 固定化酶的高温稳定性研究 | 第75-76页 |
| 3.4 小结 | 第76页 |
| 参考文献 | 第76-80页 |
| 第四章 离子液体中IPPL催化5,5-二甲基三亚甲基碳酸酯的开环聚合反应研究 | 第80-92页 |
| 4.1 引言 | 第80-81页 |
| 4.2 实验部分 | 第81-83页 |
| 4.2.1 试剂及仪器 | 第81页 |
| 4.2.2 5,5-二甲基三亚甲基碳酸酯(DTC)的合成 | 第81-82页 |
| 4.2.3 离子液体中5,5-二甲基三亚基碳酸酯的酶促开环聚合 | 第82-83页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第83-88页 |
| 4.3.1 聚合反应温度对酶促聚合反应的影响 | 第83-85页 |
| 4.3.2 聚合反应时间对酶促聚合反应的影响 | 第85-86页 |
| 4.3.3 固定化酶用量对酶促聚合反应的影响 | 第86-87页 |
| 4.3.4 离子液体用量对酶促聚合反应的影响 | 第87-88页 |
| 4.4 小结 | 第88-89页 |
| 参考文献 | 第89-92页 |
| 第五章 离子液体中IPPL催化5-甲基-5-苄氧羰基三亚甲基碳酸酯的开环聚合反应研究 | 第92-104页 |
| 5.1 引言 | 第92-93页 |
| 5.2 实验部分 | 第93-95页 |
| 5.2.1 试剂及仪器 | 第93页 |
| 5.2.2 5-甲基-5-苄氧羰基三亚甲基碳酸酯(MBC)的合成 | 第93-94页 |
| 5.2.3 离子液体中MBC的酶促开环聚合 | 第94-95页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第95-101页 |
| 5.3.1 聚合温度对酶促聚合反应的影响 | 第95-97页 |
| 5.3.2 聚合时间对酶促聚合反应的影响 | 第97-98页 |
| 5.3.3 固定化酶用量对酶促聚合反应的影响 | 第98-99页 |
| 5.3.4 离子液体用量对酶促聚合反应的影响 | 第99-101页 |
| 5.4 小结 | 第101页 |
| 参考文献 | 第101-104页 |
| 第六章 离子液体键合型IPPL催化不同单体开环聚合反应的研究 | 第104-123页 |
| 6.1 引言 | 第104-105页 |
| 6.2 实验部分 | 第105-109页 |
| 6.2.1 试剂及仪器 | 第105-106页 |
| 6.2.2 固定化载体的制备 | 第106-108页 |
| 6.2.2.1 多孔硅球的活化 | 第106页 |
| 6.2.2.2 含有硅烷基结构的离子液体的制备 | 第106-108页 |
| 6.2.2.3 酶固定化载体PSP-6的制备 | 第108页 |
| 6.2.3 固定化酶的制备 | 第108-109页 |
| 6.2.4 固定化酶活力的测定 | 第109页 |
| 6.2.5 载体表面氨基含量的测定 | 第109页 |
| 6.2.6 离子液体中ε-CL、DTC以及MBC的酶促开环聚合 | 第109页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第109-119页 |
| 6.3.1 酶固定化载体PSP-6的制备与表征 | 第109-112页 |
| 6.3.2 固定化酶的制备与表征 | 第112页 |
| 6.3.3 离子液体中IPPL-6催化开环聚合反应的研究 | 第112-119页 |
| 6.3.3.1 离子液体中IPPL-6催化ε-CL的开环聚合 | 第112-115页 |
| 6.3.3.2 离子液体中IPPL-6催化DTC的开环聚合 | 第115-118页 |
| 6.3.3.3 离子液体中IPPL-6催化MBC的开环聚合 | 第118-119页 |
| 6.4 小结 | 第119-120页 |
| 参考文献 | 第120-123页 |
| 附录 作者攻读博士学位期间已发表和待发表的论文 | 第123-124页 |
| 致谢 | 第124页 |
