| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 目录 | 第8-11页 |
| 縮略语/符号说明 | 第11-13页 |
| 前言 | 第13-16页 |
| 研究现状、成果 | 第13-15页 |
| 研究目的、方法 | 第15-16页 |
| 一、乌司他丁对重症急性胰腺炎大鼠T淋巴细胞凋亡的影响 | 第16-31页 |
| 1.1 对象和方法 | 第16-19页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第16页 |
| 1.1.2 实验试剂 | 第16-17页 |
| 1.1.3 实验仪器 | 第17页 |
| 1.1.4 动物分组和模型制备 | 第17-18页 |
| 1.1.5 标本采集和检测指标 | 第18-19页 |
| 1.1.6 统计方法 | 第19页 |
| 1.2 结果 | 第19-26页 |
| 1.2.1 CD_4~+、CD_8~+T淋巴细胞亚群比例 | 第20-22页 |
| 1.2.2 CD_4~+、CD_8~+T淋巴细胞亚群各自凋亡比例 | 第22-26页 |
| 1.3 讨论 | 第26-29页 |
| 1.3.1 SAP大鼠细胞免疫功能的改变 | 第26-27页 |
| 1.3.2 淋巴细胞过度凋亡与免疫抑制 | 第27-28页 |
| 1.3.3 乌司他丁对SAP大鼠的免疫调节效应 | 第28-29页 |
| 1.4 小结 | 第29-31页 |
| 二、乌司他丁对重症急性胰腺炎大鼠氧化应激的影响 | 第31-45页 |
| 2.1 对象和方法 | 第31-36页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第31页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第31-32页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第32页 |
| 2.1.4 动物分组和模型制备 | 第32页 |
| 2.1.5 检测指标 | 第32-35页 |
| 2.1.6 统计方法 | 第35-36页 |
| 2.2 结果 | 第36-39页 |
| 2.2.1 脾淋巴细胞内ROS荧光强度 | 第36-38页 |
| 2.2.2 血清SOD活力 | 第38-39页 |
| 2.2.3 血清MDA含量 | 第39页 |
| 2.3 讨论 | 第39-44页 |
| 2.3.1 氧化应激对SAP的影响 | 第39-42页 |
| 2.3.2 氧化应激与淋巴细胞凋亡的关系 | 第42-43页 |
| 2.3.3 乌司他丁对SAP大鼠氧化应激的影响 | 第43-44页 |
| 2.4 小结 | 第44-45页 |
| 三、乌司他丁对重症急性胰腺炎大鼠线粒体凋亡信号途径的影响 | 第45-58页 |
| 3.1 对象和方法 | 第45-48页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第45页 |
| 3.1.2 实验试剂 | 第45-46页 |
| 3.1.3 实验仪器 | 第46页 |
| 3.1.4 动物分组和模型制备 | 第46-47页 |
| 3.1.5 检测指标 | 第47-48页 |
| 3.1.6 统计方法 | 第48页 |
| 3.2 结果 | 第48-52页 |
| 3.2.1 脾淋巴细胞MMP变化 | 第48-50页 |
| 3.2.2 脾淋巴细胞MPTP开放水平 | 第50-52页 |
| 3.3 讨论 | 第52-56页 |
| 3.3.1 细胞凋亡的线粒体信号途径 | 第52-53页 |
| 3.3.2 线粒体膜电位、线粒体通透性转换与细胞凋亡的关系 | 第53-55页 |
| 3.3.3 氧化应激与线粒体凋亡途径 | 第55-56页 |
| 3.3.4 乌司他丁影响线粒体凋亡信号途径的机制 | 第56页 |
| 3.4 小结 | 第56-58页 |
| 全文结论 | 第58-60页 |
| 论文创新点 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-68页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第68-69页 |
| 附录 | 第69-70页 |
| 综述 乌司他丁的药理作用及其对免疫功能的影响机制 | 第70-79页 |
| 综述参考文献 | 第76-79页 |
| 致谢 | 第79页 |
