中文摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
缩略语/符号说明 | 第11-12页 |
前言 | 第12-15页 |
研究现状、成果 | 第12-14页 |
研究目的、方法 | 第14-15页 |
一、大鼠BMSCs体外分离、培养、鉴定及BDNF、Noggin基因转染 | 第15-35页 |
1.1 对象和方法 | 第15-23页 |
1.1.1 实验动物 | 第15页 |
1.1.2 主要仪器 | 第15页 |
1.1.3 主要试剂及耗材 | 第15-17页 |
1.1.4 实验试剂配置方法 | 第17-18页 |
1.1.5 大鼠BMSCs的分离、培养和鉴定 | 第18-20页 |
1.1.6 BDNF、Noggin基因转染BMSCs | 第20-23页 |
1.1.7 统计学分析 | 第23页 |
1.2 结果 | 第23-29页 |
1.2.1 大鼠BMSCs的分离和培养 | 第23-25页 |
1.2.2 台盼蓝拒染法测定细胞活力 | 第25页 |
1.2.3 大鼠BMSCs的鉴定 | 第25-26页 |
1.2.4 重组腺病毒载体对BMSCs生长的影响及转染效率的测定 | 第26-27页 |
1.2.5 Western blot法检测目的蛋白的表达 | 第27-29页 |
1.3 讨论 | 第29-34页 |
1.3.1 大鼠BMSCs的分离、培养和鉴定方法 | 第30-32页 |
1.3.2 BDNF和Noggin基因转染BMSCs治疗神经系统疾病 | 第32-34页 |
1.4 小结 | 第34-35页 |
二、BDNF、Noggin基因修饰的BMSCs对MCAO大鼠神经功能的修复作用 | 第35-49页 |
2.1 对象和方法 | 第35-41页 |
2.1.1 实验动物 | 第35页 |
2.1.2 主要仪器 | 第35页 |
2.1.3 主要试剂及耗材 | 第35-36页 |
2.1.4 实验试剂配置方法 | 第36页 |
2.1.5 实验方法 | 第36-39页 |
2.1.6 统计学处理 | 第39-41页 |
2.2 结果 | 第41-43页 |
2.2.1 神经功能缺损评分 | 第41页 |
2.2.2 脑梗死效果组织学判定 | 第41页 |
2.2.3 移植细胞存活及分布的检测 | 第41-43页 |
2.3 讨论 | 第43-47页 |
2.3.1 大鼠脑中动脉阻塞再灌注模型 | 第43-44页 |
2.3.2 MCAO大鼠BMSCs移植条件的选择 | 第44-46页 |
2.3.3 BMSCs移植对MCAO大鼠的神经功能的修复作用 | 第46-47页 |
2.3.4 移植细胞存活及分布 | 第47页 |
2.4 小结 | 第47-49页 |
三、BDNF、Noggin基因修饰的BMSCs对MCAO大鼠神经功能修复作用的机制 | 第49-78页 |
3.1 研究方法 | 第49-54页 |
3.1.1 主要仪器 | 第49页 |
3.1.2 主要试剂及耗材 | 第49-51页 |
3.1.3 实验方法 | 第51-54页 |
3.1.4 统计学处理 | 第54页 |
3.2 结果 | 第54-68页 |
3.2.1 各组VEGF的表达 | 第54-57页 |
3.2.2 各组BCL-2/Bax的表达 | 第57-58页 |
3.2.3 各组GSK3β/p-GSK3β的表达 | 第58-61页 |
3.2.4 各组Akt/p-Akt的表达 | 第61-62页 |
3.2.5 各组TLR4/MyD88的表达 | 第62-68页 |
3.2.6 各组MMP-9和ROS的水平 | 第68页 |
3.3 讨论 | 第68-77页 |
3.3.1 细胞替代与神经再生 | 第68-69页 |
3.3.2 促进血管新生的作用 | 第69-70页 |
3.3.3 抗细胞凋亡作用 | 第70-72页 |
3.3.4 抗炎作用 | 第72-75页 |
3.3.5 神经营养因子的分泌 | 第75-76页 |
3.3.6 激活内源性的修复途径 | 第76-77页 |
3.4 小结 | 第77-78页 |
全文结论 | 第78-79页 |
论文创新点 | 第79-80页 |
参考文献 | 第80-90页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第90-91页 |
综述 | 第91-109页 |
骨髓间充质干细胞治疗脑梗死的研究进展 | 第91-102页 |
综述参考文献 | 第102-109页 |
致谢 | 第109页 |