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BDNF和Noggin基因修饰的BMSCs对局灶性脑缺血大鼠的保护作用

中文摘要第4-6页
Abstract第6-7页
缩略语/符号说明第11-12页
前言第12-15页
    研究现状、成果第12-14页
    研究目的、方法第14-15页
一、大鼠BMSCs体外分离、培养、鉴定及BDNF、Noggin基因转染第15-35页
    1.1 对象和方法第15-23页
        1.1.1 实验动物第15页
        1.1.2 主要仪器第15页
        1.1.3 主要试剂及耗材第15-17页
        1.1.4 实验试剂配置方法第17-18页
        1.1.5 大鼠BMSCs的分离、培养和鉴定第18-20页
        1.1.6 BDNF、Noggin基因转染BMSCs第20-23页
        1.1.7 统计学分析第23页
    1.2 结果第23-29页
        1.2.1 大鼠BMSCs的分离和培养第23-25页
        1.2.2 台盼蓝拒染法测定细胞活力第25页
        1.2.3 大鼠BMSCs的鉴定第25-26页
        1.2.4 重组腺病毒载体对BMSCs生长的影响及转染效率的测定第26-27页
        1.2.5 Western blot法检测目的蛋白的表达第27-29页
    1.3 讨论第29-34页
        1.3.1 大鼠BMSCs的分离、培养和鉴定方法第30-32页
        1.3.2 BDNF和Noggin基因转染BMSCs治疗神经系统疾病第32-34页
    1.4 小结第34-35页
二、BDNF、Noggin基因修饰的BMSCs对MCAO大鼠神经功能的修复作用第35-49页
    2.1 对象和方法第35-41页
        2.1.1 实验动物第35页
        2.1.2 主要仪器第35页
        2.1.3 主要试剂及耗材第35-36页
        2.1.4 实验试剂配置方法第36页
        2.1.5 实验方法第36-39页
        2.1.6 统计学处理第39-41页
    2.2 结果第41-43页
        2.2.1 神经功能缺损评分第41页
        2.2.2 脑梗死效果组织学判定第41页
        2.2.3 移植细胞存活及分布的检测第41-43页
    2.3 讨论第43-47页
        2.3.1 大鼠脑中动脉阻塞再灌注模型第43-44页
        2.3.2 MCAO大鼠BMSCs移植条件的选择第44-46页
        2.3.3 BMSCs移植对MCAO大鼠的神经功能的修复作用第46-47页
        2.3.4 移植细胞存活及分布第47页
    2.4 小结第47-49页
三、BDNF、Noggin基因修饰的BMSCs对MCAO大鼠神经功能修复作用的机制第49-78页
    3.1 研究方法第49-54页
        3.1.1 主要仪器第49页
        3.1.2 主要试剂及耗材第49-51页
        3.1.3 实验方法第51-54页
        3.1.4 统计学处理第54页
    3.2 结果第54-68页
        3.2.1 各组VEGF的表达第54-57页
        3.2.2 各组BCL-2/Bax的表达第57-58页
        3.2.3 各组GSK3β/p-GSK3β的表达第58-61页
        3.2.4 各组Akt/p-Akt的表达第61-62页
        3.2.5 各组TLR4/MyD88的表达第62-68页
        3.2.6 各组MMP-9和ROS的水平第68页
    3.3 讨论第68-77页
        3.3.1 细胞替代与神经再生第68-69页
        3.3.2 促进血管新生的作用第69-70页
        3.3.3 抗细胞凋亡作用第70-72页
        3.3.4 抗炎作用第72-75页
        3.3.5 神经营养因子的分泌第75-76页
        3.3.6 激活内源性的修复途径第76-77页
    3.4 小结第77-78页
全文结论第78-79页
论文创新点第79-80页
参考文献第80-90页
发表论文和参加科研情况说明第90-91页
综述第91-109页
    骨髓间充质干细胞治疗脑梗死的研究进展第91-102页
    综述参考文献第102-109页
致谢第109页

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