| 缩略语简表 | 第4-6页 |
| 中文摘要 | 第6-9页 |
| ABSTRACT | 第9-11页 |
| 实验流程图 | 第12-13页 |
| 第一部分 阻断Rb-Raf-1的相互作用抑制斑马鱼侧线器神经丘毛细胞再生 | 第13-27页 |
| 1.1 前言 | 第13-14页 |
| 1.2 材料和方法 | 第14-16页 |
| 1.2.1 实验动物 | 第14-15页 |
| 1.2.2 斑马鱼侧线器毛细胞损伤模型 | 第15页 |
| 1.2.3 毛细胞的标记(FM1-43) | 第15页 |
| 1.2.4 免疫组织化学染色 | 第15-16页 |
| 1.2.5 细胞增殖实验 | 第16页 |
| 1.2.6 细胞计数和数据分析 | 第16页 |
| 1.3 结果 | 第16-18页 |
| 1.3.1 斑马鱼侧线器毛细胞的标记 | 第16-17页 |
| 1.3.2 新霉素损伤斑马鱼侧线器毛细胞的机制 | 第17页 |
| 1.3.3 新霉素损伤后神经丘中毛细胞再生机制 | 第17页 |
| 1.3.4 RRD-251在斑马鱼侧线器毛细胞再生中的作用 | 第17-18页 |
| 1.4 讨论 | 第18-20页 |
| 1.5 附图 | 第20-24页 |
| 1.6 参考文献 | 第24-27页 |
| 第二部分 鸡胚耳囊发育过程中pRb的功能调控及其作用 | 第27-48页 |
| 2.1 前言 | 第27-28页 |
| 2.2 材料和方法 | 第28-33页 |
| 2.2.1 实验动物 | 第28页 |
| 2.2.2 鸡胚耳囊的分离与培养 | 第28页 |
| 2.2.3 免疫荧光染色 | 第28-29页 |
| 2.2.4 细胞增殖实验 | 第29页 |
| 2.2.5 荧光染色结果的观察、图像的采集计数及统计学分析 | 第29-30页 |
| 2.2.6 耳囊蛋白质和mRNA的提取 | 第30-31页 |
| 2.2.7 qRT-PCR | 第31-32页 |
| 2.2.8 蛋白印迹 | 第32-33页 |
| 2.3 结果 | 第33-37页 |
| 2.3.1 Rb1和Raf-1在鸡内耳早期发育过程中的表达 | 第33-34页 |
| 2.3.2 内耳发育过程中pRb的磷酸化调控及其在增殖中的作用 | 第34-35页 |
| 2.3.3 耳囊早期发育过程中pRb磷酸化水平的降低导致细胞凋亡增加 | 第35-36页 |
| 2.3.4 AVG和OV对于阻断两条相对独立的pRb磷酸化途径的差异反应 | 第36页 |
| 2.3.5 pRb磷酸化调控和细胞周期相关基因的表达 | 第36-37页 |
| 2.4 讨论 | 第37-39页 |
| 2.5 附图 | 第39-44页 |
| 2.6 参考文献 | 第44-48页 |
| 第三部分 成年鼠耳蜗体外培养体系的建立 | 第48-66页 |
| 3.1 前言 | 第48页 |
| 3.2 实验材料和方法 | 第48-52页 |
| 3.2.1 实验动物 | 第48-49页 |
| 3.2.2 转基因动物及研究策略 | 第49-50页 |
| 3.2.3. 成年小鼠耳蜗听觉上皮的分离及培养 | 第50-51页 |
| 3.2.4 免疫荧光染色 | 第51-52页 |
| 3.2.5 细胞增殖实验 | 第52页 |
| 3.3 结果 | 第52-54页 |
| 3.3.1 体外培养过程中毛细胞的存活 | 第52-53页 |
| 3.3.2 体外培养体系中支持细胞的存活 | 第53页 |
| 3.3.3 体外培养过程中支持细胞特性的改变 | 第53-54页 |
| 3.3.4 体外培养过程中mTOR信号通路的功能活化 | 第54页 |
| 3.3.5 听觉上皮和神经元的共培养 | 第54页 |
| 3.3.6 病毒转染培养的成年鼠听觉上皮 | 第54页 |
| 3.4 讨论 | 第54-58页 |
| 3.5 附图 | 第58-64页 |
| 3.6 参考文献 | 第64-66页 |
| 综述一：依附在进化树上的毛细胞再生研究 | 第66-86页 |
| 参考文献 | 第77-86页 |
| 综述二：pRb的功能调控与细胞周期 | 第86-93页 |
| 参考文献 | 第91-93页 |
| 发表论文 | 第93-94页 |
| 致谢 | 第94-95页 |
