| 第一篇 柔嫩艾美耳球虫2-甲基柠檬酸合成酶的酶促动力学分析 | 第3-82页 |
| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-12页 |
| 缩略词 | 第12-14页 |
| 第一章 绪论 | 第14-28页 |
| 1 细胞内丙酸盐的来源 | 第14页 |
| 2 丙酸盐的分解代谢 | 第14-16页 |
| 3 2-MCC途径概况 | 第16-22页 |
| 4 顶复门原虫2-MCC途径研究进展 | 第22-25页 |
| 5 鸡球虫2-MCC途径研究现状 | 第25页 |
| 6 本研究的目的与意义 | 第25-28页 |
| 第二章 柔嫩艾美耳球虫2-MCC途径相关酶基因的克隆与序列分析 | 第28-46页 |
| 引言 | 第28页 |
| 1 材料与方法 | 第28-39页 |
| 1.1 材料 | 第28-32页 |
| 1.2 方法 | 第32-39页 |
| 2 结果与分析 | 第39-43页 |
| 2.1 RNA抽提结果 | 第39-40页 |
| 2.2 PCR扩增结果 | 第40-41页 |
| 2.3 测序结果分析 | 第41页 |
| 2.4 序列分析结果 | 第41-43页 |
| 3 讨论 | 第43-44页 |
| 4 小结 | 第44-46页 |
| 第三章 柔嫩艾美耳球虫2-MCC途径相关酶的原核表达 | 第46-56页 |
| 引言 | 第46页 |
| 1 材料与方法 | 第46-50页 |
| 1.1 材料 | 第46-47页 |
| 1.2 方法 | 第47-50页 |
| 2 结果与分析 | 第50-53页 |
| 2.1 重组表达质粒PCR鉴定结果 | 第50-52页 |
| 2.2 重组表达质粒诱导表达结果 | 第52-53页 |
| 3 讨论 | 第53-54页 |
| 4 小结 | 第54-56页 |
| 第四章 EtMS酶活力测定和动力学分析 | 第56-76页 |
| 引言 | 第56页 |
| 1 材料与方法 | 第56-61页 |
| 1.1 材料 | 第56-57页 |
| 1.2 方法 | 第57-61页 |
| 2 结果与分析 | 第61-73页 |
| 2.1 重组表达蛋白纯化结果 | 第61-62页 |
| 2.2 最适酶量确定结果 | 第62-65页 |
| 2.3 温度对EtMS活性的影响 | 第65-66页 |
| 2 4 pH值对EtMS活性的影响 | 第66-68页 |
| 2.5 EtMS Km和Vmax计算结果 | 第68-73页 |
| 2.6 EtMS kcat和kcat/Km计算结果 | 第73页 |
| 3 讨论 | 第73-74页 |
| 4 小结 | 第74-76页 |
| 结论 | 第76-78页 |
| 参考文献 | 第78-82页 |
| 第二篇 鸡球虫及其它顶复门原虫基因组DNA甲基化修饰的检测 | 第82-148页 |
| 摘要 | 第83-85页 |
| Abstract | 第85-90页 |
| 缩略词 | 第90-92页 |
| 第一章 绪论 | 第92-98页 |
| 1 基因组DNA甲基化概况 | 第92页 |
| 2 DNA甲基化修饰检测技术 | 第92-93页 |
| 3 物种间DNA甲基化修饰水平研究进展 | 第93-94页 |
| 4 寄生虫DNA甲基化修饰研究进展 | 第94-95页 |
| 5 顶复门原虫DNA甲基化修饰研究现状 | 第95页 |
| 6 本研究的目的与意义 | 第95-98页 |
| 第二章 鸡球虫及其它几种顶复门原虫基因组DNA甲基化修饰水平检测 | 第98-112页 |
| 引言 | 第98页 |
| 1 材料与方法 | 第98-104页 |
| 1.1 材料 | 第98-100页 |
| 1.2 方法 | 第100-104页 |
| 2 结果与分析 | 第104-108页 |
| 2.1 不同顶复门原虫基因组DNA甲基化水平检测结果 | 第104-105页 |
| 2.2 鸡球虫不同发育阶段基因组DNA甲基化水平Elisa-like检测结果 | 第105-107页 |
| 2.3 Bisulfite sequencing全基因组甲基化水平统计 | 第107-108页 |
| 3 讨论 | 第108-110页 |
| 4 小结 | 第110-112页 |
| 第三章 柔嫩艾美耳球虫DNA甲基化产生机理的初步探索 | 第112-118页 |
| 引言 | 第112页 |
| 1 材料与方法 | 第112-114页 |
| 1.1 材料 | 第112-113页 |
| 1.2 方法 | 第113-114页 |
| 2 结果与分析 | 第114-117页 |
| 2.1 E. tenella子孢子体外药物抑制试验结果 | 第114-116页 |
| 2.2 E. tenella子孢子总蛋白DNMTs活性检测结果 | 第116-117页 |
| 3 讨论 | 第117页 |
| 4 小结 | 第117-118页 |
| 第四章 EtDNMT2基因克隆、表达纯化与酶活力测定 | 第118-132页 |
| 引言 | 第118页 |
| 1 材料与方法 | 第118-126页 |
| 1.1 材料 | 第118-120页 |
| 1.2 方法 | 第120-126页 |
| 2 结果与分析 | 第126-129页 |
| 2.1 Etdnm2全长ORF扩增与序列分析结果 | 第126-127页 |
| 2.2 MBP-EtDNMT2重组表达纯化结果 | 第127-128页 |
| 2.3 MBP-EtDNMT2 DNMT活性检测结果 | 第128-129页 |
| 2.4 鸡球虫不同发育阶段Etdnmt2表达动态分析结果 | 第129页 |
| 3 讨论 | 第129-130页 |
| 4 小结 | 第130-132页 |
| 第五章 DNA甲基化对鸡球虫入侵细胞的影响 | 第132-142页 |
| 引言 | 第132页 |
| 1 材料与方法 | 第132-137页 |
| 1.1 材料 | 第132-133页 |
| 1.2 方法 | 第133-137页 |
| 2 结果与分析 | 第137-139页 |
| 2.1 子孢子在MDBK细胞中的入侵与发育 | 第137-138页 |
| 2.2 抑制子孢子DNA甲基化水平对其入侵细胞的影响 | 第138-139页 |
| 3 讨论 | 第139-140页 |
| 4 小结 | 第140-142页 |
| 结论 | 第142-144页 |
| 参考文献 | 第144-148页 |
| 博士后期间其它主要研究进展 | 第148-162页 |
| 致谢 | 第162-163页 |
| 附录 | 第163-164页 |
| 个人简历 | 第164-165页 |
