| 摘要 | 第7-9页 |
| ABSTRACT | 第9-10页 |
| 缩略词表 | 第11-13页 |
| 前言 | 第13-14页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-26页 |
| 1 抗坏血酸的功能研究进展 | 第14-16页 |
| 1.1 AsA在人体中的功能研究 | 第14-15页 |
| 1.2 AsA在植物生长发育中的作用 | 第15-16页 |
| 1.2.1 AsA与种子萌发 | 第15页 |
| 1.2.2 AsA与植株开花 | 第15页 |
| 1.2.3 AsA与果实发育 | 第15-16页 |
| 1.2.4 AsA与植株衰老 | 第16页 |
| 2 植物中抗坏血酸的合成与代谢 | 第16-19页 |
| 2.1 AsA的合成途径 | 第16-18页 |
| 2.1.1 甘露糖/L-半乳糖途径 | 第17-18页 |
| 2.1.2 半乳糖醛酸途径 | 第18页 |
| 2.1.3 古洛糖途径 | 第18页 |
| 2.1.4 肌醇途径 | 第18页 |
| 2.2 AsA的代谢循环途径 | 第18-19页 |
| 3 抗坏血酸在植物逆境中的作用 | 第19-21页 |
| 3.1 AsA与盐胁迫 | 第20页 |
| 3.2 AsA与干旱胁迫 | 第20-21页 |
| 3.3 AsA与其它逆境 | 第21页 |
| 4 植物激素对抗坏血酸生物合成途径的调控 | 第21-23页 |
| 5 抗坏血酸L-半乳糖途径相关基因的研究进展 | 第23-26页 |
| 5.1 PMI功能研究进展 | 第23页 |
| 5.2 PMM功能研究进展 | 第23页 |
| 5.3 VTC1功能研究进展 | 第23-24页 |
| 5.4 GME功能研究进展 | 第24页 |
| 5.5 VTC2功能研究进展 | 第24页 |
| 5.6 L-半乳糖途径其它基因功能研究进展 | 第24-26页 |
| 第二章 过氧化氢和水淹胁迫下不结球白菜抗坏血酸相关基因表达量分析 | 第26-38页 |
| 1 材料与方法 | 第28-29页 |
| 1.1 试验材料 | 第28页 |
| 1.2 试验设计 | 第28-29页 |
| 1.2.1 过氧化氢(H_2O_2)胁迫 | 第28页 |
| 1.2.2 水淹胁迫 | 第28-29页 |
| 1.3 试验方法 | 第29页 |
| 1.3.1 AsA和T-AsA含量的测定 | 第29页 |
| 1.3.2 RNA的提取与反转录 | 第29页 |
| 1.3.3 实时荧光定量PCR | 第29页 |
| 2 结果与分析 | 第29-36页 |
| 2.1 H_2O_2胁迫对'苏州青'AsA含量及相关基因表达量的影响 | 第29-33页 |
| 2.1.1 AsA和T-AsA含量 | 第29-30页 |
| 2.1.2 L-半乳糖途径相关基因表达量 | 第30页 |
| 2.1.3 AsA代谢途径相关基因表达量 | 第30-33页 |
| 2.2 水淹胁迫对'苏州青'AsA含量及相关基因表达量的影响 | 第33-36页 |
| 2.2.1 AsA和T-AsA含量 | 第33页 |
| 2.2.2 L-半乳糖途径相关基因表达量 | 第33页 |
| 2.2.3 AsA代谢途径相关基因表达量 | 第33-36页 |
| 3 讨论 | 第36-38页 |
| 第三章 外源脱落酸和乙烯对不结球白菜抗坏血酸含量及相关基因的影响 | 第38-50页 |
| 1 材料与方法 | 第40-41页 |
| 1.1 试验材料与试剂 | 第40页 |
| 1.2 试验设计 | 第40-41页 |
| 1.2.1 脱落酸(ABA)处理 | 第40-41页 |
| 1.2.2 乙烯(Ethylene)处理 | 第41页 |
| 1.3 试验方法 | 第41页 |
| 1.3.1 AsA和T-AsA含量的测定 | 第41页 |
| 1.3.2 RNA的提取与反转录 | 第41页 |
| 1.3.3 实时荧光定量PCR | 第41页 |
| 2 结果与分析 | 第41-48页 |
| 2.1 脱落酸处理对'苏州青'AsA含量及相关基因表达量的影响 | 第41-45页 |
| 2.1.1 AsA和T-AsA含量 | 第41-42页 |
| 2.1.2 AsA相关基因表达量 | 第42-45页 |
| 2.2 乙烯处理对'苏州青'AsA含量及相关基因表达量的影响 | 第45-48页 |
| 2.2.1 AsA和T-AsA含量 | 第45页 |
| 2.2.2 AsA相关基因表达量 | 第45-48页 |
| 3 讨论 | 第48-50页 |
| 第四章 不结球白菜抗坏血酸合成基因BCGME的功能分析及沉默载体的构建 | 第50-66页 |
| 1 材料与方法 | 第52-56页 |
| 1.1 试验材料 | 第52页 |
| 1.1.1 植物材料 | 第52页 |
| 1.1.2 菌株和载体 | 第52页 |
| 1.2 试验方法 | 第52-56页 |
| 1.2.1 总RNA提取及cDNA第一链合成 | 第52-53页 |
| 1.2.2 不结球白菜BcGME基因的同源克隆及测序 | 第53-54页 |
| 1.2.3 序列分析 | 第54页 |
| 1.2.4 BcGME的VIGS载体构建 | 第54-55页 |
| 1.2.5 BcGME-PCVA载体转化农杆菌 | 第55-56页 |
| 1.2.6 农杆菌菌液侵染烟草 | 第56页 |
| 2 结果与分析 | 第56-63页 |
| 2.1 不结球白菜BcGME基因的同源克隆 | 第56-57页 |
| 2.2 不结球白菜BcGME基因编码的氨基酸序列分析 | 第57-60页 |
| 2.3 不结球白菜BcGME蛋白序列的预测和分析 | 第60-61页 |
| 2.4 不结球白菜BcGME蛋白的进化树分析 | 第61-62页 |
| 2.5 BcGME-pCVA重组质粒的构建及农杆菌转化 | 第62-63页 |
| 3 讨论 | 第63-66页 |
| 全文结论 | 第66-68页 |
| 参考文献 | 第68-82页 |
| 论文发表情况 | 第82-84页 |
| 附录 | 第84-86页 |
| 致谢 | 第86页 |
