| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 1.文献综述 | 第13-22页 |
| 1.1 脂肪代谢相关基因的研究进展 | 第13-18页 |
| 1.1.1 PPAR s基因 | 第13-15页 |
| 1.1.1.1 PPAR s基因的分型、结构及组织表达分布 | 第13-14页 |
| 1.1.1.2 PPAR s的作用机理与生物功能 | 第14页 |
| 1.1.1.3 PPAR α 基因在鱼类中的研究进展 | 第14-15页 |
| 1.1.2 CPTI基因 | 第15-16页 |
| 1.1.2.1 CPT-I的构型 | 第15页 |
| 1.1.2.2 CPTI的活性调节 | 第15页 |
| 1.1.2.3 CPTI基因在鱼类中的研究进展 | 第15-16页 |
| 1.1.3 其他脂代谢相关基因 | 第16-18页 |
| 1.1.3.1 FABP基因 | 第16-17页 |
| 1.1.3.2 LPL基因 | 第17页 |
| 1.1.3.3 UCPs基因 | 第17页 |
| 1.1.3.4 FAS基因 | 第17-18页 |
| 1.1.4 前景与展望 | 第18页 |
| 1.2 PPAR α 配体的研究进展 | 第18-19页 |
| 1.3 温度对鱼类基因表达调控的研究进展 | 第19-20页 |
| 1.4 饥饿胁迫对鱼类基因表达的研究进展 | 第20页 |
| 1.5 卵形鲳鲹的概况 | 第20-21页 |
| 1.6 本研究的目的与意义 | 第21-22页 |
| 2. 卵形鲳鲹PPAR α 及CPTI基因的克隆及生物信息学分析 | 第22-53页 |
| 2.1 PPAR α 基因的克隆及生物信息学分析 | 第22-41页 |
| 2.1.1 引言 | 第22页 |
| 2.1.2 实验材料与方法 | 第22-33页 |
| 2.1.2.1 实验用鱼 | 第22页 |
| 2.1.2.2 实验试剂和耗材 | 第22-23页 |
| 2.1.2.3 主要实验仪器 | 第23页 |
| 2.1.2.4 生物信息学预测网址及软件 | 第23-24页 |
| 2.1.2.5 卵形鲳鲹肝脏中总RNA的提取 | 第24-25页 |
| 2.1.2.6 DH5α 感受态的制备 | 第25页 |
| 2.1.2.7 PPAR α 基因的RACE克隆 | 第25-33页 |
| 2.1.3 结果与分析 | 第33-39页 |
| 2.1.3.1 卵形鲳鲹总RNA的提取 | 第33页 |
| 2.1.3.2 卵形鲳鲹PPAR α 基因的克隆结果及序列分析 | 第33-36页 |
| 2.1.3.3 卵形鲳鲹PPAR α 基因的生物信息学分析 | 第36-39页 |
| 2.1.4 讨论 | 第39-41页 |
| 2.2 CPTI基因的克隆及生物信息学分析 | 第41-53页 |
| 2.2.1 引言 | 第41页 |
| 2.2.2 实验材料与方法 | 第41-43页 |
| 2.2.2.1 实验用鱼 | 第41页 |
| 2.2.2.2 实验试剂和耗材 | 第41页 |
| 2.2.2.3 主要实验仪器 | 第41页 |
| 2.2.2.4 生物信息学预测网址及软件 | 第41页 |
| 2.2.2.5 卵形鲳鲹肝脏中总RNA的提取 | 第41页 |
| 2.2.2.6 DH5α 感受态的制备 | 第41页 |
| 2.2.2.7 CPTⅠ基因的RACE克隆 | 第41-43页 |
| 2.2.3 结果与分析 | 第43-50页 |
| 2.2.3.1 卵形鲳鲹CPTⅠ基因的克隆结果及序列分析 | 第43-45页 |
| 2.2.3.2 卵形鲳鲹CPTⅠ基因的生物信息学分析 | 第45-50页 |
| 2.2.4 讨论 | 第50-53页 |
| 3. 卵形鲳鲹PPAR α 及CPTI基因mRNA的组织差异性表达分析 | 第53-58页 |
| 3.1 引言 | 第53页 |
| 3.2 实验材料与方法 | 第53-55页 |
| 3.2.1 实验用鱼 | 第53页 |
| 3.2.2 实验试剂和仪器 | 第53页 |
| 3.2.3 实验方法 | 第53-55页 |
| 3.3 结果与分析 | 第55-56页 |
| 3.3.1 PPAR α 基因的组织差异性表达 | 第55-56页 |
| 3.3.2 CPTI基因的组织差异性表达 | 第56页 |
| 3.4 讨论 | 第56-58页 |
| 4. 不同条件对卵形鲳鲹PPAR α 及CPTI基因表达的影响 | 第58-74页 |
| 4.1 非诺贝特对PPAR α 及CPTI基因表达的影响 | 第58-64页 |
| 4.1.1 引言 | 第58页 |
| 4.1.2 材料与方法 | 第58-59页 |
| 4.1.2.1 实验用鱼 | 第58页 |
| 4.1.2.2 实验试剂和仪器 | 第58页 |
| 4.1.2.3 实验方法 | 第58-59页 |
| 4.1.3 结果与分析 | 第59-63页 |
| 4.1.3.1 非诺贝特浓度组PPAR α 和CPTI的基因表达分析 | 第59-61页 |
| 4.1.3.2 非诺贝特时间组PPAR α 和CPTI的基因表达分析 | 第61-63页 |
| 4.1.4 讨论 | 第63-64页 |
| 4.2 不同温度对PPAR α 及CPTI基因表达的影响 | 第64-69页 |
| 4.2.1 引言 | 第64-65页 |
| 4.2.2 材料与方法 | 第65页 |
| 4.2.2.1 实验用鱼 | 第65页 |
| 4.2.2.2 实验试剂和仪器 | 第65页 |
| 4.2.2.3 实验方法 | 第65页 |
| 4.2.3 结果与分析 | 第65-68页 |
| 4.2.3.1 PPAR α 基因在不同温度下的时序表达 | 第65-66页 |
| 4.2.3.2 CPTI基因在不同温度下的时序表达 | 第66-68页 |
| 4.2.4 讨论 | 第68-69页 |
| 4.3 饥饿对PPAR α 及CPTI基因表达的影响 | 第69-74页 |
| 4.3.1 引言 | 第69页 |
| 4.3.2 材料与方法 | 第69-70页 |
| 4.3.2.1 实验用鱼 | 第69-70页 |
| 4.3.2.2 实验试剂和仪器 | 第70页 |
| 4.3.2.3 实验方法 | 第70页 |
| 4.3.3 结果与分析 | 第70-72页 |
| 4.3.3.1 饥饿对卵形鲳鲹PPARα 基因表达的影响 | 第70-71页 |
| 4.3.3.2 饥饿对卵形鲳鲹CPTI基因表达的影响 | 第71-72页 |
| 4.3.4 讨论 | 第72-74页 |
| 5. 结论 | 第74-77页 |
| 5.1 卵形鲳鲹PPAR α 基因的克隆 | 第74页 |
| 5.2 卵形鲳鲹CPTI基因的克隆 | 第74-75页 |
| 5.3 卵形鲳鲹PPAR α 和CPTI基因的组织表达分析 | 第75页 |
| 5.4 非诺贝特对卵形鲳鲹PPAR α 和CPTI基因表达的影响 | 第75页 |
| 5.5 不同温度对PPAR α 及CPTI基因表达的影响 | 第75页 |
| 5.6 饥饿对卵形鲳鲹PPAR α 和CPTI基因表达的影响 | 第75-77页 |
| 参考文献 | 第77-87页 |
| 致谢 | 第87-88页 |
| 作者简介 | 第88-89页 |
| 导师简介 | 第89页 |
