摘要 | 第5-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
1 绪论 | 第11-22页 |
1.1 萘普生拆分研究进展 | 第11-15页 |
1.1.1 萘普生的结构及其市场透析 | 第11页 |
1.1.2 手性及手性药物 | 第11-12页 |
1.1.3 萘普生手性拆分 | 第12-15页 |
1.2 传统动力学拆分(KR)与动态动力学拆分(DKR) | 第15-18页 |
1.2.1 传统动力学拆分(KR) | 第15-17页 |
1.2.2 动态动力学拆分(DKR) | 第17-18页 |
1.3 两相体系在酶催化中的应用 | 第18-19页 |
1.3.1 两相体系的分类及优点 | 第18-19页 |
1.3.2 水-有机溶剂两相体系介绍及其应用 | 第19页 |
1.4 微波法概述 | 第19-20页 |
1.4.1 微波概况 | 第19页 |
1.4.2 微波法作用原理 | 第19-20页 |
1.4.3 微波在有机化学中的应用 | 第20页 |
1.5 本课题来源及研究的目的和意义 | 第20-22页 |
1.5.1 课题来源 | 第20页 |
1.5.2 目的和意义 | 第20页 |
1.5.3 论文的研究内容 | 第20-22页 |
2 双液相体系的构建 | 第22-35页 |
2.1 引言 | 第22页 |
2.2 实验仪器与材料 | 第22-23页 |
2.2.1 实验仪器 | 第22-23页 |
2.2.2 实验材料 | 第23页 |
2.3 实验方法 | 第23-26页 |
2.3.1 酶的来源 | 第23-24页 |
2.3.2 萘普生甲酯化方法 | 第24页 |
2.3.3 实验分析方法 | 第24-25页 |
2.3.4 摇床反应体系的确定 | 第25-26页 |
2.4 结果与讨论 | 第26-34页 |
2.4.1 甲酯化产物的薄层色谱定性分析 | 第26-27页 |
2.4.2 水解产物萘普生定性分析 | 第27-28页 |
2.4.3 脂肪酶的筛选 | 第28页 |
2.4.4 反应时间对反应的影响 | 第28-29页 |
2.4.5 酶的添加量对反应的影响 | 第29-30页 |
2.4.6 反应温度对反应的影响 | 第30-31页 |
2.4.7 缓冲液添加量对反应的影响 | 第31-32页 |
2.4.8 有机溶剂对反应的影响 | 第32-33页 |
2.4.9 乳糖添加量对反应的影响 | 第33-34页 |
2.5 本章小结 | 第34-35页 |
3 双液相微波辅助酶催化萘普生拆分 | 第35-42页 |
3.1 引言 | 第35-36页 |
3.2 实验仪器与材料 | 第36-37页 |
3.2.1 实验仪器 | 第36页 |
3.2.2 实验材料 | 第36-37页 |
3.3 实验方法 | 第37-38页 |
3.3.1 萘普生甲酯化方法 | 第37页 |
3.3.2 产物分析方法 | 第37页 |
3.3.3 温度对微波反应的影响 | 第37页 |
3.3.4 时间对微波反应的影响 | 第37页 |
3.3.5 酶添加量对微波反应的影响 | 第37页 |
3.3.6 缓冲液添加量对微波反应的影响 | 第37-38页 |
3.4 结果与讨论 | 第38-41页 |
3.4.1 温度对微波反应的影响 | 第38页 |
3.4.2 时间对微波反应的影响 | 第38-39页 |
3.4.3 酶添加量对微波反应的影响 | 第39-40页 |
3.4.4 缓冲液用量对微波反应的影响 | 第40-41页 |
3.5 本章小结 | 第41-42页 |
4 微波辅助脂肪酶催化萘普生动态拆分 | 第42-49页 |
4.1 引言 | 第42页 |
4.2 实验仪器与材料 | 第42-43页 |
4.2.1 实验仪器 | 第42-43页 |
4.2.2 实验材料 | 第43页 |
4.3 实验方法 | 第43-45页 |
4.3.1 萘普生甲酯化方法 | 第43页 |
4.3.2 产物分析方法 | 第43页 |
4.3.3 反应器构造及原理 | 第43-44页 |
4.3.4 反应器中萘普生甲酯的动态拆分 | 第44-45页 |
4.4 结果与讨论 | 第45-48页 |
4.4.1 硅胶管渗透性的测定 | 第45页 |
4.4.2 微波法动态动力学拆分探索 | 第45-48页 |
4.5 本章小结 | 第48-49页 |
结论 | 第49-51页 |
参考文献 | 第51-55页 |
攻读学位期间发表的学术论文 | 第55-56页 |
致谢 | 第56页 |