| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-23页 |
| 1.1 小麦转基因研究现状 | 第12-15页 |
| 1.1.1 小麦转基因的方法 | 第12-13页 |
| 1.1.2 小麦转基因改良研究现状 | 第13-15页 |
| 1.2 小麦无选择标记转化研究进展 | 第15-17页 |
| 1.2.1 小麦选择标记基因及其安全问题 | 第15-16页 |
| 1.2.2 安全转基因技术 | 第16-17页 |
| 1.3 植物脂氧合酶（LOX）研究现状 | 第17-20页 |
| 1.3.1 植物脂氧合酶的特性及LOX的生物学功能 | 第17-18页 |
| 1.3.2 植物脂氧合酶基因研究进展 | 第18-19页 |
| 1.3.3 脂氧合酶活性检测方法 | 第19-20页 |
| 1.3.4 Lox基因的RNA干扰研究 | 第20页 |
| 1.4 小麦种子耐储藏性分析研究现状 | 第20-21页 |
| 1.5 本研究的目的和意义 | 第21-22页 |
| 1.6 本研究的技术路线 | 第22-23页 |
| 第二章 不含BAR基因的低脂氧合酶活性转基因小麦株系的检测 | 第23-33页 |
| 引言 | 第23页 |
| 2.1 实验材料 | 第23-24页 |
| 2.2 试剂 | 第24页 |
| 2.3 研究方法 | 第24-26页 |
| 2.3.1 基因组DNA提取及电泳检测 | 第24页 |
| 2.3.2 目标基因Loxi的PCR检测 | 第24-25页 |
| 2.3.3 Basta涂抹检测 | 第25页 |
| 2.3.4 转Loxi小麦种子脂氧合酶活性检测 | 第25页 |
| 2.3.5 小麦籽粒RNA的提取及反转录 | 第25页 |
| 2.3.6 小麦LOX家族基因RT-PCR检测 | 第25-26页 |
| 2.4 结果分析 | 第26-31页 |
| 2.4.1 转Loxi小麦PCR检测和筛选 | 第26-27页 |
| 2.4.2 Basta涂抹检测 | 第27-28页 |
| 2.4.3 转Loxi小麦种子脂氧合酶活性检测 | 第28-29页 |
| 2.4.4 半定量RT-PCR检测小麦LOX家族基因 | 第29-31页 |
| 2.5 讨论 | 第31-33页 |
| 2.5.1 转基因小麦后代PCR和Basta检测 | 第31-32页 |
| 2.5.2 转基因小麦后代种子脂氧合酶活性检测 | 第32页 |
| 2.5.3 小麦LOX家族基因半定量RT-PCR检测 | 第32-33页 |
| 第三章 小麦转基因株系种子耐储藏性分析 | 第33-39页 |
| 引言 | 第33页 |
| 3.1 实验材料 | 第33-34页 |
| 3.2 研究方法 | 第34页 |
| 3.2.1 转Loxi小麦种子的人工加速老化处理 | 第34页 |
| 3.2.2 老化后小麦种子脂氧合酶活性检测 | 第34页 |
| 3.2.3 老化后种子萌发实验 | 第34页 |
| 3.2.4 老化后种子脂肪酸组分分析 | 第34页 |
| 3.3 结果分析 | 第34-37页 |
| 3.3.1 老化后转Loxi小麦种子脂氧合酶活性检测 | 第34-35页 |
| 3.3.2 转基因小麦种子人工加速老化后萌发 7 d发芽率和芽长检测 | 第35-36页 |
| 3.3.3 转基因小麦种子老化处理后脂肪酸组分检测 | 第36-37页 |
| 3.4 讨论 | 第37-39页 |
| 3.4.1 转基因小麦种子LOX活性降低，种子的耐储藏能力增加 | 第37-39页 |
| 第四章 全文总结 | 第39-40页 |
| 4.1 全文总结 | 第39页 |
| 4.2 创新点 | 第39-40页 |
| 参考文献 | 第40-48页 |
| 致谢 | 第48-49页 |
| 作者简介 | 第49页 |
