| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 第1章 前言 | 第10-12页 |
| 第2章 实验材料 | 第12-14页 |
| 2.1 实验动物 | 第12页 |
| 2.2 实验试剂 | 第12-13页 |
| 2.3 主要仪器和设备 | 第13-14页 |
| 第3章 材料与方法 | 第14-24页 |
| 3.1 MSCs体外分离培养和鉴定 | 第14-15页 |
| 3.1.1 MSCs的提取、培养、传代 | 第14页 |
| 3.1.2 MSCs表面标记的鉴定 | 第14-15页 |
| 3.2 bFGF基因转染MSCs | 第15-17页 |
| 3.2.1 空质粒pcDNA3.1 和重组质粒bFGF-pcDNA3.1 的提取和扩增 | 第15-16页 |
| 3.2.2 bFGF质粒和空质粒转染大鼠MSCs | 第16-17页 |
| 3.3 移植前CM-Dil标记MSCs | 第17页 |
| 3.4 COPD大鼠模型的制备及实验分组处理 | 第17-18页 |
| 3.4.1 制造COPD大鼠模型 | 第17页 |
| 3.4.2 实验分组及处理 | 第17-18页 |
| 3.4.3 收集动物肺组织和外周血标本 | 第18页 |
| 3.5 组织标本处理和HE染色 | 第18-19页 |
| 3.6 外周血中炎症因子IL-10、IL-4 的水平 | 第19-20页 |
| 3.7 肺组织中炎症因子IL-10、IL-4 mRNA的表达 | 第20-22页 |
| 3.7.1 RNA的提取 | 第20页 |
| 3.7.2 RNA的逆转录 | 第20-21页 |
| 3.7.3 引物设计 | 第21页 |
| 3.7.4 Real-Time PCR反应 | 第21-22页 |
| 3.8 CM-Dil标记联合免疫荧光染色法观察MSCs分化情况 | 第22页 |
| 3.9 统计学方法 | 第22-24页 |
| 第4章 结果 | 第24-35页 |
| 4.1 MSCs的细胞鉴定 | 第24-25页 |
| 4.2 检测所得的质粒载体图谱 | 第25-26页 |
| 4.3 bFGF-pcDNA3.1 质粒和pcDNA3.1 质粒转染MSCs | 第26-27页 |
| 4.4 各组大鼠肺组织病理学改变 | 第27-29页 |
| 4.5 外周血中炎症因子IL-10、IL-4 的检测 | 第29页 |
| 4.6 肺组织中IL-10、IL-4 mRNA的相对表达 | 第29-30页 |
| 4.7 MSCs在大鼠肺组织内的分化 | 第30-35页 |
| 第5章 讨论 | 第35-38页 |
| 第6章 小结与展望 | 第38-39页 |
| 致谢 | 第39-40页 |
| 参考文献 | 第40-43页 |
| 综述 | 第43-46页 |
| 参考文献 | 第46页 |
