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维生素D对恶性转化的小鼠卵巢表面上皮细胞肿瘤干细胞样细胞特性的影响

中文摘要第4-8页
Abstract第8-11页
引言第14-18页
第一部分 卵巢癌干细胞样细胞的分选和鉴定第18-42页
    1 材料与方法第19-27页
        1.1 设备和器材第19-20页
        1.2 试剂第20-21页
        1.3 实验方法第21-27页
        1.4 统计学方法第27页
    2 结果第27-37页
        2.1 SP细胞的分选第27-28页
        2.2 SP细胞的自我更新能力第28-29页
        2.3 SP细胞的干细胞标志物表达第29-30页
        2.4 SP细胞多能干性相关基因的表达第30-31页
        2.5 SP细胞耐药基因ABCG2的表达第31-32页
        2.6 SP细胞对X射线和重粒子的辐射抗性第32-34页
        2.7 SP细胞的体内致瘤性第34-37页
    3 讨论第37-42页
第二部分 维生素D对SP细胞肿瘤干细胞特性的影响第42-60页
    1 材料与方法第42-45页
        1.1 设备和器材第42-43页
        1.2 试剂第43页
        1.3 方法第43-45页
    2 结果第45-55页
        2.1 1a,25(OH)_2D_3作用剂量的确定第45页
        2.2 1a,25(OH)_2D_3对SP细胞形态的影响第45-46页
        2.3 1a,25(OH)_2D_3对SP细胞悬浮球成球能力的影响第46-47页
        2.4 1a,25(OH)_2D_3对SP细胞干细胞标志物及多能干性相关基因的影响第47-48页
        2.5 1a,25(OH)_2D_3对SP细胞周期的影响第48-49页
        2.6 1a,25(OH)_2D_3对SP细胞抗药性的影响第49-50页
        2.7 Matrigel模拟体内致瘤性实验第50-51页
        2.8 维生素D3对SP细胞致瘤性的影响第51-55页
    3 讨论第55-60页
第三部分 1α,25(OH)_2D_3对SP细胞VDR/β-catenin通路相关分子表达的影响第60-72页
    1 材料与方法第60-63页
        1.1 设备和器材第60-61页
        1.2 试剂与试剂配方第61页
        1.3 方法第61-62页
        1.4 统计学方法第62-63页
    2 结果第63-68页
        2.1 1a,25(OH)_2D_3对SP细胞VDR/β-catenin信号通路的影响第63-66页
        2.2 1a,25(OH)_2D_3对SP细胞维生素D代谢降解酶和VDR基因的影响第66-68页
    3 讨论第68-72页
结论第72-73页
参考文献第73-86页
综述:肿瘤中的Wnt信号通路第86-104页
    综述参考文献第96-104页
研究生期间科研经历及发表文章第104-105页
附录一:自发荧光细胞的比例测定第105-106页
附录二:1a,25(OH)_2D_3对E-cadherin蛋白表达的影响第106-107页
中英缩略语对照表第107-108页
致谢第108-111页

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