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常见中药的提取分离新技术研究

致谢第4-5页
摘要第5-6页
Abstract第6-7页
专业术语符号表第8-13页
第一章 引言第13-36页
    1.1 中药成分的提取方法第13-21页
        1.1.1 常规提取方法第13-21页
            1.1.1.1 溶剂提取法第13-15页
            1.1.1.2 水蒸汽蒸馏法第15页
            1.1.1.3 升华法第15-16页
            1.1.1.4 超声辅助提取法第16-17页
            1.1.1.5 微波辅助提取法第17-19页
            1.1.3.1 固相微萃取第19-20页
            1.1.3.2 液相微萃取第20-21页
    1.2 中药成分的检测方法第21-25页
        1.2.1 高效液相色谱法第21-22页
        1.2.2.气相色谱法第22-23页
        1.2.3 毛细管电泳法第23页
        1.2.4 色谱质谱联用法第23-25页
    1.3 课题研究内容第25-27页
    参考文献第27-36页
第二章 磁性纳米颗粒固定化酶-超高效液相色谱-质谱筛选丹参中的凝血酶抑制剂第36-55页
    2.1 前言第36-38页
    2.2 实验部分第38-41页
        2.2.1 化学试剂和药品第38页
        2.2.2 仪器和色谱条件第38-39页
        2.2.3 磁珠固定化酶的制备第39-40页
        2.2.4 凝血酶-磁珠结合率第40页
        2.2.5 配体筛选的优化第40页
        2.2.6 酶抑制性试验第40-41页
    2.3 结果与讨论第41-50页
        2.3.1 磁珠固定化凝血酶的表征第41-42页
        2.3.2 分析物的鉴别第42-44页
        2.3.3 磁珠用量第44页
        2.3.4 洗脱溶剂的种类第44-45页
        2.3.5 孵育温度第45-46页
        2.3.6 孵育时间第46-47页
        2.3.7 方法学考察第47-48页
        2.3.8 样品筛选第48-50页
        2.3.9 凝血酶抑制试验第50页
    2.4 结论第50页
    附录第50-51页
    参考文献第51-55页
第三章 离子液和壳聚糖纳米粒子提取和富集姜黄中的天然色素第55-78页
    3.1 前言第55-56页
    3.2 实验部分第56-59页
        3.2.1 材料与试剂第56-57页
        3.2.2 仪器和色谱条件第57-58页
        3.2.3 壳聚糖纳米粒子的合成第58页
        3.2.4 标准溶液的制备第58页
        3.2.5 药典提取法第58-59页
        3.2.6 天然色素的提取和富集第59页
    3.3 结果与讨论第59-71页
        3.3.1 鉴别第59-62页
            3.3.1.1 壳聚糖与壳聚糖纳米粒子的形貌分析第59-60页
            3.3.1.2 提取物中化合物的鉴别第60-62页
        3.3.2. UAE-DMSPE条件的优化第62-67页
            3.3.2.1 离子液种类的考察第62-63页
            3.3.2.2 [C12mim]Br浓度的考察第63-64页
            3.3.2.3 壳聚糖纳米粒子浓度的考察第64页
            3.3.2.4 洗脱溶剂的考察第64-65页
            3.3.2.5 振荡时间的考察第65-66页
            3.3.2.6 提取液pH的考察第66-67页
        3.3.3 方法学考察第67-69页
            3.3.3.1 方法学验证第67-68页
            3.3.3.2 基质效应第68页
            3.3.3.3 样品测定第68-69页
        3.3.4 提取方法比较第69-71页
    3.4 结论第71页
    附录第71-72页
    参考文献第72-78页
第四章 壳聚糖-分散微固相萃取槐花中的黄酮醇第78-94页
    4.1 前言第78-79页
    4.2 实验部分第79-81页
        4.2.1 化学药品及试剂第79-80页
        4.2.2 仪器设备第80页
        4.2.3 样品制备第80页
        4.2.4 提取方法第80-81页
    4.3 结果与讨论第81-88页
        4.3.1 分析物鉴别第81-82页
        4.3.2 提取条件的优化第82-85页
            4.3.2.1 壳聚糖浓度的考察第82页
            4.3.2.2 壳聚糖粘度的考察第82-83页
            4.3.2.3 提取时间的考察第83-84页
            4.3.2.4 样品溶液pH的考察第84-85页
        4.3.3 方法学验证第85-86页
        4.3.4 样品分析第86-87页
        4.3.5 提取方法比较第87-88页
    4.4 结论第88页
    附录第88-89页
    参考文献第89-94页
第五章 微型基质固相分散萃取金银花中的酚酸第94-110页
    5.1 前言第94-95页
    5.2 实验部分第95-97页
        5.2.1 化学药品和试剂第95-96页
        5.2.2 超声提取方法第96页
        5.2.3 微型基质固相分散方法第96页
        5.2.4 仪器第96-97页
    5.3 结果与讨论第97-104页
        5.3.1 分析物的鉴别第97-98页
        5.3.2 吸附剂种类的考察第98-99页
        5.3.3 分散剂用量的考察第99-100页
        5.3.4 研磨时间的考察第100-101页
        5.3.5 洗脱溶剂的考察第101页
        5.3.6 方法学验证第101-102页
        5.3.7 样品分析第102-104页
        5.3.8 提取方法比较第104页
    5.4 结论第104页
    附录第104-105页
    参考文献第105-110页
第六章 小型化基质固相分散法提取枳壳中的黄酮苷第110-127页
    6.1 前言第110-111页
    6.2 实验部分第111-113页
        6.2.1 试剂和材料第111-112页
        6.2.2 仪器和分析条件第112页
        6.2.3 加热回流提取方法第112页
        6.2.4 小型化基质固相分散提取方法第112-113页
        6.2.5 方法学验证第113页
    6.3 结果与讨论第113-121页
        6.3.1 离子液的优化第113-116页
        6.3.2 分散剂种类的选择第116页
        6.3.3 样品与吸附剂质量比的优化第116-117页
        6.3.4 研磨时间的考察第117-118页
        6.3.5 溶剂与分散剂间的相互作用第118-119页
        6.3.6 方法学验证第119页
        6.3.7 样品分析第119-120页
        6.3.8 提取方法比较第120-121页
    6.4 结论第121页
    附录第121-122页
    参考文献第122-127页
第七章 多壁碳纳米管-毛细管电泳检测海带中的碘化物第127-139页
    7.1 前言第127-128页
    7.2 实验部分第128-130页
        7.2.1 化学品和材料第128-129页
        7.2.2.仪器第129-130页
        7.2.3 样品制备第130页
    7.3 结果与讨论第130-136页
        7.3.1 缓冲液的优化第130页
        7.3.2 碳纳米管分散介质的考察第130-131页
        7.3.3 多壁碳纳米管浓度的考察第131-132页
        7.3.4 其它因素的优化第132-133页
        7.3.5 方法学验证第133-135页
            7.3.5.1 线性、检出限和定量限第134页
            7.3.5.2 精密度和准确性第134-135页
        7.3.6 样品分析第135页
        7.3.7 分离方法比较第135-136页
    7.4 结论第136页
    附录第136-137页
    参考文献第137-139页
第八章 全文总结和展望第139-142页
    8.1 全文总结第139-140页
    8.2 主要创新点和展望第140-142页
硕士阶段的科研成果第142-147页
    学术论文第142-146页
    国家发明专利第146-147页
个人简历第147页

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