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初级纤毛对缺氧环境下PC12细胞抗氧化活性的影响

英文缩略词表第3-4页
中文摘要第4-6页
Abstract第6-7页
第一章 前言第11-21页
    1第11-18页
        1.1 缺氧与高原反应第11页
        1.2 HIF-α和Nrf2的研究进展第11-13页
        1.3 初级纤毛的结构第13-14页
        1.4 初级纤毛的发生与解体第14-15页
        1.5 影响初级纤毛长度的因素第15-16页
        1.6 初级纤毛在部分信号通路中的作用第16-17页
        1.7 初级纤毛与缺氧的相关性第17-18页
    2 立题依据与技术路线第18-21页
        2.1 立题依据第18-21页
第二章 缺氧对PC12细胞初级纤毛长度及发生率的影响第21-29页
    2.1 材料与方法第22页
        2.1.1 实验材料与试剂第22页
        2.1.2 实验仪器第22页
    2.2 方法第22-24页
        2.2.1 PC12细胞培养与形态学观察第22页
        2.2.2 PC12细胞的物理性缺氧处理第22-23页
        2.2.3 PC12细胞的氯化钴模拟化学性缺氧处理第23页
        2.2.4 免疫荧光染色法观察缺氧前后PC12细胞初级纤毛长度及发生率第23页
        2.2.5 统计学处理第23-24页
    2.3 结果第24-27页
        2.3.1 缺氧后PC12细胞的形态变化第24-25页
        2.3.2 缺氧环境下初级纤毛发生率的变化第25-26页
        2.3.3 缺氧培养前后初级纤毛长度的变化第26-27页
    2.4 讨论第27-28页
    2.5 结论第28-29页
第三章 缺氧状态下PC12细胞抗氧化活性的变化第29-40页
    3.1 材料第30页
        3.1.1 实验材料第30页
        3.1.2 试剂与仪器第30页
    3.2 方法第30-32页
        3.2.1 免疫荧光染色法观察缺氧前后胞内HIF-1α、HIF-2α及Nrf2核转位情况第30-31页
        3.2.2 RT-PCR法检测缺氧培养前后PC12细胞内HIF-1α、Nrf2、VEGF及SOD基因表达水平的变化情况第31页
        3.2.3 WesternBlot法检测缺氧培养前后PC12细胞内HIF-1α、Nrf2、VEGF及SOD蛋白表达水平的变化第31-32页
        3.2.4 统计学处理第32页
    3.3 结果第32-39页
        3.3.1 缺氧前后HIF-1α、HIF-2α及Nrf2发生核转位情况第32-34页
        3.3.2 缺氧培养对缺氧相关因子基因表达的影响第34-37页
        3.3.3 缺氧培养对缺氧相关因子蛋白表达的影响第37-39页
    3.4 讨论第39-40页
第四章 初级纤毛对PC12细胞在缺氧状态下抗氧化活性的影响第40-62页
    4.1 实验材料第41-42页
        4.1.1 材料及试剂第41页
        4.1.2 抗体第41-42页
    4.2 方法第42-44页
        4.2.1 细胞培养及缺氧培养第42页
        4.2.2 siRNA法干扰初级纤毛发生。第42页
        4.2.3 免疫荧光染色第42-43页
        4.2.4 Real Time PCR法第43页
        4.2.5 WesternBlot法第43-44页
        4.2.6 统计学处理第44页
    4.3 结果第44-60页
        4.3.1 初级纤毛siRNA干扰方法的建立第44-46页
        4.3.2 初级纤毛发生被抑制后,纤毛长度及发生率的变化第46-50页
        4.3.3 缺氧培养对脱纤毛细胞的形态影响第50-51页
        4.3.4 脱纤毛细胞的HIF-1α、HIF-2α及Nrf2发生核转位情况第51-54页
        4.3.5 初级纤毛干扰后HIF-1α、Nrf2、VEGF及SOD的基因表达情况第54-56页
        4.3.6 初级纤毛干扰后HIF-1α、Nrf2、VEGF及SOD蛋白表达情况第56-60页
    4.4 讨论第60-61页
    4.5 结论第61-62页
第五章 结论第62-63页
参考文献第63-69页
硕士期间科研成果第69-70页
致谢第70页

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