| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-22页 |
| 1.1 罗布麻概述 | 第13-15页 |
| 1.1.1 罗布麻生长状况 | 第13页 |
| 1.1.2 罗布麻韧皮的化学组成 | 第13页 |
| 1.1.3 罗布麻纤维的结构特性 | 第13-14页 |
| 1.1.4 罗布麻的用途 | 第14页 |
| 1.1.5 罗布麻纺织品的优异性能 | 第14页 |
| 1.1.6 罗布麻生物脱胶研究概况与作用机制 | 第14-15页 |
| 1.2 果胶酶概述 | 第15-20页 |
| 1.2.1 果胶质分类组成与性质 | 第15-17页 |
| 1.2.2 果胶酶理化与酶学性质 | 第17页 |
| 1.2.3 果胶酶分类与作用机制 | 第17-20页 |
| 1.2.3.1 果胶酯酶(Pectinesterase,PE) | 第18页 |
| 1.2.3.2 解聚酶(Depolymerizing enzymes) | 第18-20页 |
| 1.2.3.3 原果胶酶(ProLopecLinase,PPase) | 第20页 |
| 1.3 果胶酶生产菌种 | 第20-21页 |
| 1.4 研究意义、目的及内容 | 第21-22页 |
| 第二章 罗布麻脱胶菌种的分离筛选与鉴定 | 第22-31页 |
| 2.1 引言 | 第22页 |
| 2.2 材料与方法 | 第22-26页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第22-23页 |
| 2.2.1.1 罗布麻 | 第22-23页 |
| 2.2.1.2 主要仪器设备 | 第23页 |
| 2.2.1.3 主要试剂 | 第23页 |
| 2.2.2 实验方法 | 第23-26页 |
| 2.2.2.1 培养基 | 第23-24页 |
| 2.2.2.2 残胶率测定 | 第24页 |
| 2.2.2.3 菌种筛选流程 | 第24页 |
| 2.2.2.4 菌种初筛 | 第24页 |
| 2.2.2.5 菌种复筛 | 第24页 |
| 2.2.2.6 菌种的鉴证流程 | 第24-25页 |
| 2.2.2.7 16S rDNA PCR | 第25页 |
| 2.2.2.8 PCR产物电泳 | 第25页 |
| 2.2.2.9 PCR产物纯化 | 第25页 |
| 2.2.2.10 PCR产物的序列测定和分析 | 第25-26页 |
| 2.2.2.11 菌株菌落形态特征 | 第26页 |
| 2.2.2.12 菌株生理生化特征 | 第26页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第26-30页 |
| 2.3.1 果胶酶菌种筛选 | 第26-27页 |
| 2.3.2 菌种分子生物学鉴定 | 第27-28页 |
| 2.3.2.1 菌种16S rDNA PCR | 第27-28页 |
| 2.3.2.2 16S rDNA PCR产物纯化 | 第28页 |
| 2.3.2.3 16S rDNA PCR产物的序列测定和分析 | 第28页 |
| 2.3.3 菌株菌落形态特征 | 第28-29页 |
| 2.3.4 菌株的形态特征 | 第29页 |
| 2.3.5 菌种生理生化鉴定 | 第29-30页 |
| 2.4 小结 | 第30-31页 |
| 第三章 菌种生长优化 | 第31-47页 |
| 3.1 引言 | 第31页 |
| 3.2 材料与仪器 | 第31-32页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第31-32页 |
| 3.2.1.1 菌种 | 第31页 |
| 3.2.1.2 主要实验仪器 | 第31-32页 |
| 3.2.1.3 主要试剂 | 第32页 |
| 3.3 试验方法 | 第32-35页 |
| 3.3.1 培养基 | 第32-33页 |
| 3.3.2 种子发酵液的制备 | 第33页 |
| 3.3.3 培养基的单因素实验 | 第33-34页 |
| 3.3.3.1 初始pH | 第33页 |
| 3.3.3.2 碳源 | 第33页 |
| 3.3.3.3 氮源 | 第33页 |
| 3.3.3.4 无机盐 | 第33-34页 |
| 3.3.3.5 碳氮比 | 第34页 |
| 3.3.4 Bacillus subtilis S-1培养基优化正交试验 | 第34页 |
| 3.3.5 Acinetobacter funii S-3培养基优化正交试验 | 第34-35页 |
| 3.3.6 菌体生长条件优化 | 第35页 |
| 3.4 实验结果与分析 | 第35-46页 |
| 3.4.1 Bacillus subtilis S-1培养基的单因素实验结果与分析 | 第35-39页 |
| 3.4.1.1 初始pH单因素实验结果 | 第35-36页 |
| 3.4.1.2 碳源实验结果分析 | 第36-37页 |
| 3.4.1.3 氮源实验结果分析 | 第37页 |
| 3.4.1.4 无机盐实验结果分析 | 第37-38页 |
| 3.4.1.5 碳氮比实验结果分析 | 第38-39页 |
| 3.4.2 Bacillus subtilis S-1培养基优化正交试验结果与分析 | 第39-40页 |
| 3.4.3 Acinetobacter junii S-3培养基的单因素实验结果与分析 | 第40-43页 |
| 3.4.3.1 初始pH单因素实验 | 第40-41页 |
| 3.4.3.2 碳源单因素实验 | 第41页 |
| 3.4.3.3 氮源单因素实验 | 第41-42页 |
| 3.4.3.4 无机盐单因素实验 | 第42-43页 |
| 3.4.3.5 碳氮比单因素实验 | 第43页 |
| 3.4.4 Acinetobacter junii S-3培养基优化正交试验结果与分析 | 第43-45页 |
| 3.4.5 最适温度测定 | 第45-46页 |
| 3.5 小结 | 第46-47页 |
| 第四章 果胶酶酶学初步分析 | 第47-60页 |
| 4.1 引言 | 第47页 |
| 4.2 材料与方法 | 第47-55页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第47-48页 |
| 4.2.1.1 菌种 | 第47-48页 |
| 4.2.1.2 主要实验仪器 | 第48页 |
| 4.2.1.3 主要试剂 | 第48页 |
| 4.2.2 试验方法 | 第48-55页 |
| 4.2.2.1 培养基 | 第48-49页 |
| 4.2.2.2 还原糖标准曲线测定 | 第49页 |
| 4.2.2.3 还原糖法测果胶酶活力 | 第49-50页 |
| 4.2.2.4 果胶酶最适pH的测定 | 第50页 |
| 4.2.2.5 果胶酶最适温度的测定 | 第50页 |
| 4.2.2.6 果胶酶温度稳定性 | 第50页 |
| 4.2.2.7 紫外吸收法测定果胶裂解酶活性 | 第50页 |
| 4.2.2.8 还原糖法测定羧甲基纤维素(CMC)酶活性 | 第50-51页 |
| 4.2.2.9 还原糖法测定半纤维素酶活性 | 第51页 |
| 4.2.2.10 果胶酶硫酸铵沉淀 | 第51页 |
| 4.2.2.11 果胶酶丙酮分级沉淀 | 第51页 |
| 4.2.2.12 SDS-PAGE技术 | 第51-52页 |
| 4.2.2.13 发酵液蛋白含量的测定 | 第52-54页 |
| 4.2.2.14 蛋白质分子量计算方法 | 第54页 |
| 4.2.2.15 诱导酶检测 | 第54-55页 |
| 4.3 结果与分析 | 第55-59页 |
| 4.3.1 果胶酶酶谱分析 | 第55页 |
| 4.3.2 果胶酶最适pH的测定 | 第55-56页 |
| 4.3.3 果胶酶最适温度的测定 | 第56页 |
| 4.3.4 温度稳定性的研究 | 第56-57页 |
| 4.3.5 硫酸铵分级沉淀 | 第57-58页 |
| 4.3.6 粗酶液蛋白含量测定 | 第58页 |
| 4.3.7 丙酮分级沉淀与果胶酶分子量初步测定 | 第58-59页 |
| 4.3.8 诱导酶性质鉴定 | 第59页 |
| 4.4 小结 | 第59-60页 |
| 第五章 罗布麻生物脱胶工艺条件优化 | 第60-71页 |
| 5.1 引言 | 第60页 |
| 5.2 材料与方法 | 第60-63页 |
| 5.2.1 实验材料 | 第60-61页 |
| 5.2.1.1 罗布麻 | 第60页 |
| 5.2.1.2 主要仪器设备 | 第60页 |
| 5.2.1.3 主要试剂 | 第60-61页 |
| 5.2.2 试验方法 | 第61-63页 |
| 5.2.2.1 培养基 | 第61页 |
| 5.2.2.2 生长曲线测定 | 第61页 |
| 5.2.2.3 残胶率测定 | 第61页 |
| 5.2.2.4 脱胶率测定 | 第61页 |
| 5.2.2.5 单因素试验 | 第61-62页 |
| 5.2.2.6 正交试验 | 第62-63页 |
| 5.3 结果与分析 | 第63-70页 |
| 5.3.1 生长曲线测定 | 第63-64页 |
| 5.3.2 单因素试验 | 第64-70页 |
| 5.3.2.1 初始pH | 第64-65页 |
| 5.3.2.2 升温脱胶温度 | 第65页 |
| 5.3.2.3 升温脱胶时间 | 第65页 |
| 5.3.2.4 脱胶时间 | 第65-66页 |
| 5.3.2.5 脱胶温度 | 第66-67页 |
| 5.3.2.6 浴水比 | 第67-68页 |
| 5.3.2.7 接种量 | 第68页 |
| 5.3.2.8 正交试验 | 第68-70页 |
| 5.4 小结 | 第70-71页 |
| 第六章 果胶酶发酵条件初步优化 | 第71-75页 |
| 6.1 引言 | 第71页 |
| 6.2 材料与方法 | 第71-72页 |
| 6.2.1 实验材料 | 第71-72页 |
| 6.2.1.1 菌种 | 第71-72页 |
| 6.2.1.2 主要实验仪器 | 第72页 |
| 6.2.2 实验方法 | 第72页 |
| 6.2.2.1 培养基 | 第72页 |
| 6.2.2.2 碳源优化 | 第72页 |
| 6.2.2.3 初始pH优化 | 第72页 |
| 6.2.2.4 氮源与无机盐等优化 | 第72页 |
| 6.3 结果与分析 | 第72-74页 |
| 6.3.1 碳源优化 | 第72-73页 |
| 6.3.2 初始pH的优化 | 第73-74页 |
| 6.3.3 对比实验 | 第74页 |
| 6.4 小结 | 第74-75页 |
| 第七章 结论 | 第75-76页 |
| 参考文献 | 第76-80页 |
| 致谢 | 第80-81页 |
| 附录 | 第81页 |
