| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-32页 |
| 1.1 蔗糖酯 | 第10-17页 |
| 1.1.1 蔗糖酯的理化性质 | 第10-11页 |
| 1.1.2 蔗糖酯的应用 | 第11-13页 |
| 1.1.3 蔗糖酯的合成方法 | 第13-16页 |
| 1.1.4 蔗糖酯的分离 | 第16-17页 |
| 1.2 脂肪酶的相关介绍 | 第17-22页 |
| 1.2.1 常用的脂肪酶及其应用 | 第17-19页 |
| 1.2.2 脂肪酶的分子结构 | 第19-20页 |
| 1.2.3 脂肪酶的性质研究及催化特性 | 第20页 |
| 1.2.4 脂肪酶催化酯交换的机理 | 第20-22页 |
| 1.3 酶法合成蔗糖酯 | 第22-28页 |
| 1.3.1 酶法合成蔗糖酯合成的选性性 | 第22-24页 |
| 1.3.2 酶法合成蔗糖酯反应的影响因素 | 第24-27页 |
| 1.3.3 目前酶法合成蔗糖酯的主要难题 | 第27-28页 |
| 1.4 两相体系在酶催化中的应用 | 第28-30页 |
| 1.4.1 酶法反应-萃取耦合技术 | 第28页 |
| 1.4.2 两相体系分类及其优点 | 第28页 |
| 1.4.3 水-有机溶剂两相体系介绍及其应用 | 第28-29页 |
| 1.4.4 脂肪酶两相体系催化研究进展 | 第29-30页 |
| 1.5 本课题立题依据及主要研究内容 | 第30-32页 |
| 第二章 脂肪酶催化合成蔗糖酯的初步探索 | 第32-43页 |
| 2.1 引言 | 第32页 |
| 2.2 材料与方法 | 第32-35页 |
| 2.2.1 材料 | 第32-33页 |
| 2.2.2 仪器 | 第33页 |
| 2.2.3 实验方法 | 第33-35页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第35-42页 |
| 2.3.1 不同展开剂和不同显色剂 | 第35页 |
| 2.3.2 在缓冲液单相体系中研究蔗糖的酶法酯化情况 | 第35-41页 |
| 2.3.3 在两相体系中研究蔗糖的酶法酯化情况 | 第41-42页 |
| 2.4 小结 | 第42-43页 |
| 第三章 蔗糖乙酸酯高效液相色谱分析条件的确定 | 第43-49页 |
| 3.1 引言 | 第43页 |
| 3.2 材料与方法 | 第43-45页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第43页 |
| 3.2.2 实验设备 | 第43-44页 |
| 3.2.3 实验方法 | 第44-45页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第45-48页 |
| 3.3.1 分析条件的确立 | 第45-46页 |
| 3.3.2 蔗糖乙酸单酯的定性 | 第46-47页 |
| 3.3.3 反应液上下相的单酯峰面积比较 | 第47页 |
| 3.3.4 方法的线性范围 | 第47-48页 |
| 3.4 小结 | 第48-49页 |
| 第四章 两相体系脂肪酶催化合成蔗糖乙酸酯的研究 | 第49-58页 |
| 4.1 引言 | 第49页 |
| 4.2 材料与方法 | 第49-51页 |
| 4.2.1 材料 | 第49页 |
| 4.2.2 主要仪器 | 第49-50页 |
| 4.2.3 实验方法 | 第50-51页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第51-56页 |
| 4.3.1 不同两相体积比的影响 | 第51-52页 |
| 4.3.2 不同时间的影响 | 第52-53页 |
| 4.3.3 不同pH的影响 | 第53-54页 |
| 4.3.4 不同温度的影响 | 第54页 |
| 4.3.5 不同酶量的影响 | 第54-55页 |
| 4.3.6 不同糖酯比的影响 | 第55-56页 |
| 4.4 小结 | 第56-58页 |
| 第五章 总结 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-64页 |
| 致谢 | 第64-65页 |
| 攻读学位期间发表论文 | 第65页 |