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吉非替尼和锂盐治疗骨性关节炎的效应和机制研究

致谢第5-6页
中文摘要第6-8页
Abstract第8-10页
缩略词第11-17页
绪论第17-22页
第一部分 EGFR抑制剂与骨性关节炎第22-48页
    1 EGFR受体在骨性关节炎中的表达第24-29页
        1.1 引言第24页
        1.2 实验试剂与仪器第24-25页
            1.2.1 材料和试剂第24-25页
            1.2.2 相关试剂的配制第25页
        1.3 实验方法第25-27页
            1.3.1 组织蛋白样本准备第25页
            1.3.2 Western-Blot第25-26页
            1.3.3 组织免疫荧光第26-27页
        1.4 实验结果第27-29页
    2 EGFR抑制剂吉非替尼对软骨细胞的功能和机制研究第29-40页
        2.1 引言第29页
        2.2 实验试剂与仪器第29-31页
            2.2.1 材料和试剂第29-30页
            2.2.2 质粒、载体及菌株第30页
            2.2.3 相关试剂配制第30-31页
        2.3 实验方法第31-37页
            2.3.1 人软骨细胞的分离和培养第31页
            2.3.2 细胞冻存第31页
            2.3.3 细胞复苏第31-32页
            2.3.4 siRNA转染步骤第32页
            2.3.5 感受态细胞的制备第32-33页
            2.3.6 质粒转化第33页
            2.3.7 质粒大量抽提第33-34页
            2.3.8 病毒包装第34-35页
            2.3.9 病毒感染第35页
            2.3.10 提取RNA第35-36页
            2.3.11 逆转录合成cDNA第36页
            2.3.12 实时荧光定量PCR(Real time PCR)第36-37页
            2.3.13 细胞蛋白样本准备第37页
            2.3.14 Western-Blot第37页
        2.4 实验结果第37-40页
            2.4.1 EGFR受体在软骨细胞中的功能第37-38页
            2.4.2 吉非替尼在软骨细胞中的功能和机制第38-40页
    3 EGFR抑制剂吉非替尼在骨性关节炎治疗中的作用和机制研究第40-48页
        3.1 引言第40页
        3.2 实验试剂与仪器第40-41页
            3.2.1 材料和试剂第40页
            3.2.2 实验仪器及材料第40-41页
            3.2.3 实验动物第41页
            3.2.4 相关溶液的配制第41页
        3.3 实验方法第41-43页
            3.3.1 壳聚糖微球的制备第41页
            3.3.2 扫描电镜样本制备第41页
            3.3.3 微球缓释检测第41-42页
            3.3.4 小鼠骨性关节炎造模第42页
            3.3.5 动物实验分组第42页
            3.3.6 动物给药方式第42页
            3.3.7 H&E染色第42-43页
            3.3.8 SO染色第43页
            3.3.9 免疫组化(IHC)染色第43页
        3.4 实验结果第43-48页
            3.4.1 构建吉非替尼壳聚糖缓释微球并评估其表征第43-45页
            3.4.2 吉非替尼抑制体内骨性关节炎的进展第45-46页
            3.4.3 吉非替尼抑制体内骨性关节炎的进展的机制第46-48页
第二部分 讨论第48-50页
第三部分 氯化锂与骨软骨缺损第50-73页
    4 构建含锂介孔生物活性玻璃支架并评估支架表征的研究第52-56页
        4.1 引言第52页
        4.2 实验试剂与仪器第52-53页
            4.2.1 材料和试剂第52页
            4.2.2 实验仪器及材料第52-53页
            4.2.3 相关试剂的配制第53页
        4.3 实验方法第53-54页
            4.3.1 介孔生物活性玻璃支架的制备第53页
            4.3.2 扫描电镜样本制备第53页
            4.3.3 人BMSCs的分离和培养第53页
            4.3.4 支架缓解曲线测定第53-54页
            4.3.5 细胞增殖(CCK-8)测定第54页
        4.4 实验结果第54-56页
            4.4.1 构建Li-MBG支架并评估支架的表征第54-56页
    5 含锂介孔生物活性玻璃支架促进软骨下骨修复的研究第56-61页
        5.1 引言第56页
        5.2 实验试剂与仪器第56-57页
            5.2.1 材料和试剂第56页
            5.2.2 实验仪器及材料第56页
            5.2.3 相关试剂的配制第56-57页
        5.3 实验方法第57-58页
            5.3.1 兔子骨软骨缺损的建立和支架植入第57页
            5.3.2 兔子膝关节样本的ICRS评估第57页
            5.3.3 软骨下骨的Micro-CT第57-58页
        5.4 实验结果第58-61页
            5.4.1 Li-MBG促进骨软骨缺损再生的研究第58-61页
    6 含锂介孔生物活性玻璃支架促进软骨下骨修复的机制研究第61-65页
        6.1 引言第61页
        6.2 实验试剂与仪器第61-62页
            6.2.1 材料和试剂第61-62页
            6.2.2 实验仪器及材料第62页
            6.2.3 相关试剂的配制第62页
        6.3 实验方法第62-63页
            6.3.1 人BMSCs的分离和培养第62页
            6.3.2 CCK-8检测第62页
            6.3.3 定向诱导BMSCs向成骨细胞分化第62-63页
            6.3.4 实时荧光定量PCR第63页
            6.3.5 Western Blot第63页
        6.4 实验结果第63-65页
    7 含锂介孔生物活性玻璃支架促进软骨修复的效应研究第65-68页
        7.1 引言第65页
        7.2 实验试剂与仪器第65页
            7.2.1 材料和试剂第65页
            7.2.2 SO染色相关试剂的配制第65页
        7.3 实验方法第65-66页
            7.3.1 SO染色第65页
            7.3.2 ICRS评分第65-66页
        7.4 实验结果第66-68页
    8 氯化锂保护软骨的机制研究第68-73页
        8.1 引言第68页
        8.2 实验试剂与仪器第68-69页
            8.2.1 材料和试剂第68-69页
            8.2.2 相关试剂的配制第69页
        8.3 实验方法第69页
            8.3.1 小鼠骨性关节炎造模第69页
            8.3.2 动物实验分组第69页
            8.3.3 动物给药方式第69页
            8.3.4 小鼠软骨细胞的培养第69页
            8.3.5 病毒包装和感染第69页
            8.3.6 实时定量PCR第69页
            8.3.7 Western Blot第69页
        8.4 实验结果第69-73页
第四部分 讨论第73-79页
    9 总结第75-79页
        9.1 关节腔缓释EGFR抑制剂吉非替尼治疗骨性关节炎的研究第75-76页
        9.2 缓释锂离子介孔生物活性玻璃支架促进骨软骨缺损修复的研究第76-79页
参考文献第79-87页
综述第87-111页
    参考文献第100-111页
作者简历第111-113页

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