| 前言 | 第5-6页 |
| 中文摘要 | 第6-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 英文缩写词表 | 第14-15页 |
| 第1章 文献综述 | 第15-23页 |
| 1.1 镉的毒性 | 第15-16页 |
| 1.2 镉的致癌性 | 第16-17页 |
| 1.3 镉与细胞增殖 | 第17-18页 |
| 1.4 镉与凋亡 | 第18-20页 |
| 1.5 镉与 DNA 甲基化 | 第20-23页 |
| 1.5.1 高甲基化 | 第20-21页 |
| 1.5.2 低甲基化 | 第21-23页 |
| 第2章 材料与方法 | 第23-33页 |
| 2.1 实验材料 | 第23-25页 |
| 2.1.1 实验细胞 | 第23页 |
| 2.1.2 主要仪器与设备 | 第23-24页 |
| 2.1.3 实验试剂 | 第24-25页 |
| 2.2 实验方法 | 第25-33页 |
| 2.2.1 细胞培养 | 第25-26页 |
| 2.2.2 MTT 确定长期培养 L-02 的氯化镉浓度 | 第26页 |
| 2.2.3 细胞形态学分析 | 第26页 |
| 2.2.4 Transwell 检测细胞迁移侵袭能力 | 第26-27页 |
| 2.2.5 细胞克隆形成实验 | 第27页 |
| 2.2.6 台盼蓝染色检测细胞增殖率，倍增时间和细胞活力 | 第27-28页 |
| 2.2.7 流式细胞术检测细胞内 ROS 水平 | 第28页 |
| 2.2.8 流式细胞术检测细胞凋亡率 | 第28页 |
| 2.2.9 WB 检测蛋白表达 | 第28-30页 |
| 2.2.10 限制性内切酶酶切电泳法检测基因组 DNA 甲基化水平 | 第30-31页 |
| 2.2.11 MSP（甲基化特异性 PCR） | 第31-32页 |
| 2.2.12 统计学分析 | 第32-33页 |
| 第3章 结果 | 第33-48页 |
| 3.1 镉与人正常肝细胞 L-02 | 第33-45页 |
| 3.1.1 MTT 确定镉作用浓度 | 第33-34页 |
| 3.1.2 根据细胞形态和蛋白表达变化确定镉作用时间 | 第34-35页 |
| 3.1.3 转化细胞增殖能力和 ROS 的变化 | 第35-38页 |
| 3.1.4 转化细胞基因组甲基化水平的变化 | 第38页 |
| 3.1.5 5-aza 对转化细胞蛋白表达，凋亡，增殖能力的影响 | 第38-43页 |
| 3.1.6 5-aza 对 caspase-8 基因启动子甲基化的影响 | 第43-45页 |
| 3.2 DNA 甲基化与肝癌细胞 HepG-2 | 第45-48页 |
| 3.2.1 5-aza 对肝癌细胞 caspase-8 基因启动子甲基化的影响 | 第45-46页 |
| 3.2.2 5-aza 对肝癌细胞蛋白表达和细胞活性的影响 | 第46-48页 |
| 第4章 讨论 | 第48-52页 |
| 第5章 结论 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-66页 |
| 在读期间所取得的科研成果 | 第66-67页 |
| 获奖经历 | 第67-68页 |
| 致谢 | 第68-69页 |
