| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6页 |
| 符号及缩略词表 | 第9-10页 |
| 第一章 绪论 | 第10-17页 |
| 1.1 西葫芦概述 | 第10页 |
| 1.2 西葫芦育种进展 | 第10-11页 |
| 1.3 西葫芦主要病毒病 | 第11-12页 |
| 1.3.1 葫芦科的主要病毒病 | 第11页 |
| 1.3.2 西葫芦病毒病 | 第11页 |
| 1.3.3 番木瓜环斑病毒西瓜株系（PRSV-w） | 第11-12页 |
| 1.3.4 黄瓜花叶病毒（CMV） | 第12页 |
| 1.4 分子标记技术 | 第12-15页 |
| 1.4.1 SSR分子标记技术研究进展 | 第13-14页 |
| 1.4.1.1 开发SSR分子标记的传统方法 | 第13-14页 |
| 1.4.1.2 运用富集技术筛选SSR分子标记 | 第14页 |
| 1.4.1.3 运用PCR技术开发SSR分子标记 | 第14页 |
| 1.4.2 PCR技术 | 第14-15页 |
| 1.4.3 分子标记辅助选择 | 第15页 |
| 1.5 研究目的及意义 | 第15-17页 |
| 第二章 西葫芦抗PRSV-w、CMV遗传规律研究 | 第17-23页 |
| 2.1 材料和方法 | 第17-21页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第17-18页 |
| 2.1.2 种子处理 | 第18页 |
| 2.1.3 病毒扩繁 | 第18页 |
| 2.1.4 病毒接种 | 第18-19页 |
| 2.1.5 PRSV-w和CMV单株发病分级标准： | 第19-21页 |
| 2.2 结果与分析 | 第21-22页 |
| 2.3 讨论 | 第22-23页 |
| 第三章 西葫芦SSR-PCR反应体系优化 | 第23-29页 |
| 3.1 试验材料 | 第23页 |
| 3.1.1 西葫芦材料 | 第23页 |
| 3.1.2 仪器和药品 | 第23页 |
| 3.2 试验方法 | 第23-24页 |
| 3.2.1 主要试验试剂的配制 | 第23-24页 |
| 3.2.2 西葫芦DNA提取方法 | 第24页 |
| 3.3 SSR-PCR反应体系优化 | 第24-27页 |
| 3.3.1 西葫芦DNA提取质量检测 | 第24页 |
| 3.3.2 SSR-PCR反应体系优化 | 第24-25页 |
| 3.3.3 电泳结果分析 | 第25-27页 |
| 3.3.3.1 Acr-bis胶的制备 | 第25-26页 |
| 3.3.3.2 电泳 | 第26页 |
| 3.3.3.3 固定、银染、显色 | 第26-27页 |
| 3.4 结果与分析 | 第27-28页 |
| 3.5 讨论 | 第28-29页 |
| 第四章 西葫芦抗PRSV-w、CMV的SSR引物筛选 | 第29-34页 |
| 4.1 试验材料 | 第29页 |
| 4.1.1 西葫芦材料 | 第29页 |
| 4.1.2 仪器和药品 | 第29页 |
| 4.2 试验方法 | 第29页 |
| 4.2.1 引物 | 第29页 |
| 4.2.2 西葫芦DNA提取方法(碱裂解法) | 第29页 |
| 4.2.3 F_2DNA池的构建 | 第29页 |
| 4.3 结果与分析 | 第29-32页 |
| 4.3.1 SSR标记在A群体和B群体父母本中的差异 | 第29-30页 |
| 4.3.2 F_2多态性SSR标记筛选 | 第30-32页 |
| 4.3.3 SSR分子标记在F_2中的连锁分析 | 第32页 |
| 4.4 讨论 | 第32-34页 |
| 结论 | 第34-35页 |
| 致谢 | 第35-36页 |
| 参考文献 | 第36-40页 |
| 作者简介 | 第40-41页 |
