| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 第一章 绪论 | 第11-15页 |
| 1.1 课题来源、研究的目的和意义 | 第11-13页 |
| 1.2 国内外研究概况 | 第13-14页 |
| 1.2.1 国外研究概况 | 第13-14页 |
| 1.2.2 国内研究概况 | 第14页 |
| 1.3 论文的主要研究内容 | 第14-15页 |
| 第二章 材料与方法 | 第15-28页 |
| 2.1 研究资料及仪器设备 | 第15-18页 |
| 2.1.1 研究对象 | 第15页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第15-16页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第16-18页 |
| 2.2 实验流程与方法 | 第18-28页 |
| 2.2.1 大鼠颅脑锐器割伤模型的建立 | 第18-19页 |
| 2.2.2 用于蛋白定量分析的组织取材 | 第19-20页 |
| 2.2.3 用于脑切片的组织取材 | 第20页 |
| 2.2.4 原代星形胶质细胞培养及炎症模型的建立 | 第20-21页 |
| 2.2.4.1 原代星形胶质细胞培养 | 第20-21页 |
| 2.2.4.2 LPS诱导星形胶质细胞炎症模型的建立 | 第21页 |
| 2.2.5 原代神经元培养及凋亡模型的建立 | 第21-22页 |
| 2.2.5.1 原代神经元的培养 | 第21页 |
| 2.2.5.2 CM诱导原代神经元凋亡的模型建立 | 第21-22页 |
| 2.2.6 Western Blot | 第22-23页 |
| 2.2.6.1 组织蛋白提取及处理 | 第22页 |
| 2.2.6.2 细胞蛋白提取 | 第22页 |
| 2.2.6.3 SDS-PAGE凝胶电泳和蛋白质免疫检测 | 第22-23页 |
| 2.2.7 免疫组织化学染色 | 第23-24页 |
| 2.2.8 组织免疫荧光双标记 | 第24页 |
| 2.2.9 TUNEL法检测凋亡 | 第24页 |
| 2.2.10 细胞免疫荧光双标记 | 第24-25页 |
| 2.2.11 ELISA | 第25页 |
| 2.2.12 细胞毒性检测 | 第25-26页 |
| 2.2.13 ADK siRNA oligo的获取 | 第26页 |
| 2.2.14 ADK siRNA oligo转染 | 第26-27页 |
| 2.2.15 数据处理 | 第27-28页 |
| 2.2.15.1 免疫组织化学细胞计数 | 第27页 |
| 2.2.15.2 免疫荧光双标细胞计数 | 第27页 |
| 2.2.15.3 统计学处理 | 第27-28页 |
| 第三章 结果 | 第28-45页 |
| 3.1 ADK在TBI后的表达及分布变化 | 第28-30页 |
| 3.1.1 Western Blot检测TBI中ADK表达变化 | 第28-29页 |
| 3.1.2 免疫组织化学染色检测TBI中ADK的分布变化 | 第29-30页 |
| 3.2 TBI后ADK的细胞定位变化 | 第30-32页 |
| 3.3 TBI后损伤侧皮质发生神经元凋亡和星形胶质细胞活化 | 第32-34页 |
| 3.3.1 TUNEL法检测TBI后神经元凋亡 | 第32-33页 |
| 3.3.2 TBI后星形胶质细胞活化的情况 | 第33-34页 |
| 3.4 ADK在LPS诱导的活化星形胶质细胞中表达增加 | 第34-37页 |
| 3.5 星形胶质细胞活化导致神经元凋亡 | 第37-40页 |
| 3.6 ADK减少原代星形胶质细胞炎性因子的释放 | 第40-42页 |
| 3.7 ADK参与胶质细胞活化介导的神经元凋亡 | 第42-45页 |
| 第四章 讨论 | 第45-49页 |
| 4.1 TBI中存在星形胶质细胞神经元调控 | 第45-46页 |
| 4.2 ADK参与TBI后星形胶质细胞活化 | 第46-47页 |
| 4.3 ADK调控星形胶质细胞释放炎性因子 | 第47-49页 |
| 第五章 结论 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-55页 |
| 英文缩写词表 | 第55-57页 |
| 综述 | 第57-75页 |
| 综述参考文献 | 第67-75页 |
| 在攻读硕士学位期间公开发表的论文与参加的项目 | 第75-77页 |
| A：在国内外刊物上发表的论文 | 第75-76页 |
| B：所参加的学术会议 | 第76页 |
| C：所参加的项目 | 第76-77页 |
| 致谢 | 第77-78页 |
| 附录：攻读学位期间获得的主要荣誉 | 第78-82页 |
