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人头颈部鳞癌ALDHhigh CSC DCs和细胞因子致敏T细胞、B细胞体外靶向ALDHhigh CSCs的研究

中文摘要第3-5页
Abstract第5-6页
缩略语/符号说明第10-11页
前言第11-14页
    研究现状、成果第11-12页
    研究目的、方法第12-14页
一、DC细胞培养及ALDH~(high) CSCs的分离第14-35页
    1.1 对象与方法第14-22页
        1.1.1 主要仪器及设备第14页
        1.1.2 主要试剂第14-15页
        1.1.3 病例来源第15页
        1.1.4 细胞系构建与培养第15-17页
        1.1.5 PBMCs磁珠分选第17-19页
        1.1.6 将CD3-CD19-外周单个核细胞培养成为树突状细胞第19-20页
        1.1.7 细胞表型分析第20页
        1.1.8 肿瘤细胞ALDH分选第20-22页
        1.1.9 肿瘤细胞裂解液的制备第22页
        1.1.10 肿瘤细胞裂解液冲击DC细胞制备DC疫苗第22页
        1.1.11 统计学处理第22页
    1.2 结果第22-32页
        1.2.1 HNSCC患者外周血中提取单个核细胞第22-26页
        1.2.2 头颈部鳞癌患者肿瘤细胞中ALDH~(high) 细胞的分析第26-28页
        1.2.3 HLA在ALDH~(high) 肿瘤干细胞和ALDH~(low)非肿瘤干细胞中的表达第28-30页
        1.2.4 外周血CD3-/CD19-单个核细胞上分子表面抗原的表达第30-32页
    1.3 讨论第32-34页
        1.3.1 ALDH作为肿瘤干细胞的分选标记第32-33页
        1.3.2 HLA在ALDH表达第33-34页
    1.4 小结第34-35页
二、人头颈部鳞癌ALDH~(high) 肿瘤干细胞负载后的DC能够诱导特异性T细胞抗肿瘤干细胞反应第35-45页
    2.1 对象与方法第35-39页
        2.1.1 主要仪器及设备第35页
        2.1.2 主要试剂第35页
        2.1.3 体外激活及致敏T细胞第35-36页
        2.1.4 细胞杀伤能力实验第36-37页
        2.1.5 细胞因子检测第37-39页
        2.1.6 统计学处理第39页
    2.2 结果第39-42页
        2.2.1 ALDH~(high)-DC致敏后的T细胞对ALDH~(high) CSCs的杀伤能力增强第39-41页
        2.2.2 ALDH~(high)-DC致敏的T细胞针对ALDH~(high) CSCs分泌IFN-γ增多第41页
        2.2.3 ALDH~(high)-DC致敏的T细胞针对ALDH~(high) CSCs分泌GM-CSF增多第41-42页
    2.3 讨论第42-44页
    2.4 小结第44-45页
三、人头颈部鳞癌ALDH~(high) CSCs负载后的DC能够诱导B细胞产生特异性抗肿瘤干细胞体液第45-54页
    3.1 对象与方法第45-48页
        3.1.1 主要仪器及设备第45页
        3.1.2 主要试剂第45页
        3.1.3 体外激活致敏CD19+B细胞第45页
        3.1.4 抗体生成量检测第45-46页
        3.1.5 细胞抗体IgG检测第46-47页
        3.1.6 细胞抗体IgM检测第47-48页
        3.1.7 Bind实验第48页
    3.2 结果第48-52页
        3.2.1 ALDH~(high)-DC致敏的B细胞针对ALDH~(high) CSCs分泌Ig M增多第48-49页
        3.2.2 ALDH~(high)-DC致敏的B细胞针对ALDH~(high) CSCs分泌Ig G增多第49-50页
        3.2.3 B细胞产生的Ig G具有一定得特异性第50-52页
    3.3 讨论第52-53页
    3.4 小结第53-54页
全文结论第54-55页
论文创新点第55-56页
参考文献第56-66页
发表论文和参加科研情况说明第66-67页
附录第67-69页
综述 CIK细胞及其在肿瘤治疗中的进展第69-90页
    综述参考文献第79-90页
致谢第90-92页
个人简历第92页

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