| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 主要词汇对照表 | 第8-12页 |
| 第1章 引言 | 第12-20页 |
| 1.1 青藏高原自然环境的特点 | 第12页 |
| 1.2 大通牦牛对低氧环境的适应 | 第12-15页 |
| 1.2.1 大通牦牛组织形态学特点 | 第13-14页 |
| 1.2.2 大通牦牛生理、生化特点 | 第14页 |
| 1.2.3 大通牦牛分子生物学特点 | 第14-15页 |
| 1.3 低氧环境对牦牛心肌细胞能量代谢的影响 | 第15-16页 |
| 1.4 低氧环境对线粒体结构功能及能量代谢的影响 | 第16-18页 |
| 1.4.1 低氧环境对线粒体结构功能的影响 | 第16页 |
| 1.4.2 低氧环境对细胞线粒体能量代谢的影响 | 第16-17页 |
| 1.4.3 线粒体标志性酶研究进展 | 第17-18页 |
| 1.5 低氧环境对低氧诱导因子的影响 | 第18-19页 |
| 1.6 低氧环境对血管内皮因子的影响 | 第19页 |
| 1.7 研究目的及意义 | 第19-20页 |
| 第2章 不同发育期大通牦牛心肌线粒体超微结构形态学研究 | 第20-25页 |
| 2.1 本章引论 | 第20-21页 |
| 2.2 材料与方法 | 第21-22页 |
| 2.2.1 动物来源 | 第21页 |
| 2.2.2 取材及处理 | 第21页 |
| 2.2.3 形态立体定量分析方法 | 第21-22页 |
| 2.2.4 数据处理 | 第22页 |
| 2.3 实验结果 | 第22-23页 |
| 2.3.1 不同发育期大通牦牛心肌线粒体的立体定性分析 | 第22-23页 |
| 2.3.2 不同发育期大通牦牛心肌线粒体的立体定量分析 | 第23页 |
| 2.4 讨论 | 第23-25页 |
| 第3章 绝对定量测定不同发育期大通牦牛心肌线粒体标志性酶COX、SDHmRNA表达量 | 第25-42页 |
| 3.1 本章引言 | 第25页 |
| 3.2 材料与方法 | 第25-32页 |
| 3.2.1 样品采集与处理 | 第25-26页 |
| 3.2.2 主要仪器与试剂 | 第26页 |
| 3.2.3 实验方法 | 第26-32页 |
| 3.3 实验结果 | 第32-40页 |
| 3.3.1 提取总RNA检测结果 | 第32页 |
| 3.3.2 常规PCR结果 | 第32-33页 |
| 3.3.3 阳性重组子检测结果 | 第33-37页 |
| 3.3.4 阳性重组质粒酶切结果 | 第37-38页 |
| 3.3.5 绝对定量标准曲线 | 第38-39页 |
| 3.3.6 COX基因mRNA表达量分析 | 第39-40页 |
| 3.3.7 SDH基因mRNA表达量分析 | 第40页 |
| 3.4 讨论 | 第40-42页 |
| 第4章 相对定量PCR检测不同发育期大通牦牛心肌组织中HIF-1α 基因mRNA表达量 | 第42-49页 |
| 4.1 本章引言 | 第42页 |
| 4.2 实验材料与方法 | 第42-46页 |
| 4.2.1 材料与试剂 | 第42-43页 |
| 4.2.2 设计并合成引物 | 第43页 |
| 4.2.3 提取牦牛心肌组织总RNA并检测 | 第43页 |
| 4.2.4 RT-PCR合成第一链cDNA | 第43-44页 |
| 4.2.5 PCR扩增目的基因片段 | 第44-45页 |
| 4.2.6 琼脂糖凝胶电泳检测目的基因片段 | 第45页 |
| 4.2.7 Real-time PCR反应 | 第45-46页 |
| 4.3 相对定量PCR结果 | 第46-48页 |
| 4.3.1 提取总RNA检测结果 | 第46页 |
| 4.3.2 常规PCR结果 | 第46页 |
| 4.3.3 相对定量溶解曲线 | 第46-47页 |
| 4.3.4 大通牦牛心肌组织中HIF-1α 基因mRNA表达量 | 第47-48页 |
| 4.4 讨论 | 第48-49页 |
| 第5章 免疫组织化学方法分析不同发育期大通牦牛心肌组织中VEGF和MVD分布情况 | 第49-55页 |
| 5.1 本章引论 | 第49-50页 |
| 5.2 实验材料与方法 | 第50页 |
| 5.2.1 材料与试剂 | 第50页 |
| 5.2.2 实验方法 | 第50页 |
| 5.3 实验结果 | 第50-53页 |
| 5.4 讨论 | 第53-55页 |
| 第6章 结论 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-63页 |
| 致谢 | 第63-64页 |
| 个人简介 | 第64-65页 |
